Estímulo do comportamento fotoautotrófico durante o enraizamento in vitro de Annona glabra L. , II. Aspectos da anatomia da folha antes da aclimatização

Abstract

RESUMOA baixa sobrevivência durante a aclimatização de plantas regeneradas através da micropropagação tem sido atribuída, entre vários fatores, à baixa capacidade fotossintética. O desenvolvimento de protocolos que utilizem sistemas de cultivo in vitro fotoautotróficos surgem como possibilidades potenciais para aumentar a eficiência da micropropagação. Objetivou-se, neste trabalho comparar as medições dos tecidos foliares de plantas de Annona glabra L. cultivadas in vitro, sob condições de estímulo ao fotoautotrofismo e heterotróficas, durante a fase de enraizamento, com plantas ex vitro (mantidas sob radiação fotossintética ativa de 130-170µmol.m -2 .s -1 , sem controle de temperatura). As brotações foram enraizadas em condições de estímulo ao fotoautotrofismo (meio sem sacarose e com aeração) e em condições heterotróficas (meio com sacarose e sem aeração). O meio de cultivo utilizado foi o WPM adicionado de 164,4mM de carvão ativado e 4,9µM AIB. Após 30 dias de cultivo realizaram-se medições das espessuras das epidermes abaxial, adaxial, parênquima esponjoso, paliçadico e do limbo. Verificaram-se variações na anatomia das folhas, que foram caracterizadas por um aumento na espessura foliar de acordo com a aeração estabelecida. O enraizamento de plantas de A. glabra em condições de estímulo ao fotoautotrofismo permitiu desenvolvimento anátomo-fisiológico semelhante àquele observado em condições ex vitro, o que pode minimizar as perdas no processo de micropropagação.Termos para indexação: Cultura de tecidos, rustificação, redução de custos, Annona glabra. ABSTRACTThe low survival during the acclimatization of plants regenerated through the micropropagation has been attributed, among several factors, to low the photosynthetic capacity. The development of photoautotrophic in vitro culture systems appears as potential possibilities of increasing the efficiency of the micropropagation. The aim of this work was to compare the leaf anatomy of plants of Annona glabra L. cultivated in vitro, under photoautotrophic and heterotrophic conditions, during the phase of rooting, with ex vitro (maintained in greenhouse under photosynthetic acitve radiation of 130-170µmol.m -2 .s -1 , without control of room temperature). Shoots were rooted in photoautotrophic conditions (sucrose-free medium with aeration) heterotrophic conditions (medium with sucrose without ventilation). The medium of culture was the WPM supplied of 164.4mM of activated charcoal and 4.9 M AIB. After 30 days of culture measurements of the foliar thickness of the epidermises abaxial, adaxial, parenchyma spongy, palisade and limb one. Verified variations in the anatomy of the leaves, that had been characterized by an increase in the leaf thickness in accordance with the established aeration. In vitro photoautotrophic rooting of plants Annona glabra L stimulated an anatomical and physiological development similar to the one observed in an ex vitro condition, which may minimize the losses at the acclimatization process.

Sealing and explant types on the mangaba micropropagation

“…Santana et al (2008) obtained greater root growth of pond-apple kept in flasks sealed with plastic cap without PVC film. In potato seedlings cultivated in vitro (Solanum tuberosum L.), sealing ventilated with polyethylene membrane promoted greater leaf length (MOHAMED; ALSADON, 2010).…”

“…Ethylene accumulation has an adverse effect on plant development, affecting differentiation, development, morphology and growth, decreasing leaf expansion and length of shoots, inhibiting the regeneration of new shoots and causing apical necrosis (BIDDINGTON, 1992 cited by ERIG;SCHUCH, 2005), and promoting leaf abscission in in vitro cultivation. The use of more permeable flask sealing caps has promoted an increase in CO 2 concentration and, simultaneously, a reduction in relative humidity and ethylene concentration (KOZAI;NGUYEN, 2003;SANTANA et al, 2008), enabling gas exchange (SANTANA et al, 2011).…”

Luz natural e concentrações de sacarose no cultivo in vitro de Cattleya walkeriana

“…Os altos custos na produção de mudas por cultura de tecidos, entre outros fatores, relacionam-se ao alto consumo de energia elétrica nos laboratórios, principalmente em salas de crescimento (ERIG & SCHUCH, 2005;GRATTAPAGLIA & MACHADO, 1998;KODYM & ZAPATA-ARIAS, 1999;SAVANGIKAR, 2004;BRAGA, et al, 2009), e à baixa eficiência de aclimatização por causa da heterotrofia dos tecidos cultivados, resultantes do ambiente imposto pelas condições de cultivo in vitro (ARIGITA et al, 2002;KOZAI & KUBOTA, 2001). Entre os fatores relacionados à condição heterotrófica das plantas in vitro, destaca-se (ECONOMOU & READ, 1987;IBARAKI & NOZAKI, 2005) a adição de fonte externa de luz e carboidrato ao meio de cultura (KOZAI et al, 1991;PRAKASH et al, 2004;REZENDE et al, 2008;SANTANA et al, 2008;SERRET et al, 1997). Essa condição de cultivo, resulta em diversas alterações morfológicas e fisiológicas de plântulas cultivadas in vitro, que são responsáveis por grande parte das perdas durante a aclimatização.…”

In vitrohaderning in different enviroment and acclimatization of microplants ofComanthera mucugensisGiul. subsp.mucugensis

“…mucugensis contradiz diversos trabalhos que descrevem a anatomia das plantas in vitro. Em geral, as plantas in vitro não possuem mecanismos contra a perda de água, em função de sua adaptação ao ambiente com elevada umidade e baixa irradiância de fótons (BELLINTANI et al, 2007;COSTA et al, 2009;SANTANA et al, 2008).…”