Se ha realizado un gran número de estudios para identificar los efectos de los metales pesados en plantas cultivadas y en algunas especies consideradas como hiperacumuladoras. Sin embargo, po¬cos esfuerzos se han dedicado a la evaluación de especies vegetales nativas de zonas áridas para fitorremediación. Este estudio se llevó a cabo ex situ para evaluar la tasa de fitoextracción de plomo en Acacia farnesiana L. Will. Se utilizaron árboles jóvenes (n=48), colocados en macetas plásticas, en donde se agregó una combinación de tres concentraciones de plomo (0, 250 y 500 mg•kg-1) en forma de Pb(NO3)2 y cuatro dosis de nitrógeno (0, 100, 300 y 500 mg•kg-1) en forma de Fosfo-Nitrato (33-03-00). Se evaluó la tasa fotosintética y la concentración de plomo en raíz, tallo y hoja. Las dosis de nitrógeno y las concentraciones de plomo por separado no produjeron diferencias significativas en la tasa fotosintética de las plantas de huizache, pero la interacción entre esos dos factores fue es¬tadísticamente significativa (P=0.0074), encontrándose que la mayor acumulación de plomo ocurrió en la parte aérea de la planta con una media de 352.34 mg•kg-1.

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Las respuestas embriogénicas y organogénicas en nogal (Carya illinoinensis [Wangenh] K. Koch) se observaron bajo el cultivo in vitro de segmentos de hojas, yemas axilares y embriones cigóticos. El necrosamiento se controló empleando carbón activado (CA: 1 %), polivinilpirrolidona (0.1 %), nitrato de plata (AgNO3: 1 %), ácido cítrico (150 mg·L-1) y ácido ascórbico (100 mg·L- 1), con presencia de luz y en oscuridad. Se utilizó el medio básico de Murashige y Skoog suplementado con 0.40 mg·L-1 de tiamina, 100 mg·L-1 de myo-inositol, 3 % de sacarosa, incorporando 2,4-D para hojas, tidiazurón (TDZ) para embriones, y las combinaciones de benciladenina (BA), kinetina (KIN), ácido naftalenacético (ANA) y ácido indolbutírico (AIB) para yemas axilares. El necrosamiento de tejidos se redujo en 75 % y 83 % adicionando CA y AgNO3, respectivamente. El 33 % y 66 % de los callos embriogénicos se indujeron a partir de hojas, utilizando 1 y 3 mg·L-1 de 2,4-D. La mayor producción de callos (58 %) a partir de embriones se obtuvo con la concentración de 3 mg·L-1 de TDZ. En yemas axilares, la combinación de KIN (3.0 μM), BA (1.0 μM) y AIB (0.3 μM) incrementó el número de hojas y plántulas, y longitud de brotes.

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Introduction: Viviparity in pecan nut (Carya illinoinensis [Wangenh.] K. Koch) has increased considerably. This genetic-environmental phenomenon can be controlled with soil moisture management and other quality variables.Objective: To determine the effect of soil moisture content on yield, nut size, kernel percentage and germinated nut on the tree.Materials and methods: Forty-year-old pecan nut trees were irrigated by 40 emitters with an output of 3.2 L∙h-1. From the phenological stage of shell hardening, irrigation time was 4, 6 and 8 h, corresponding to moisture levels of 0.257, 0.327 and 0.380 m3 of water per m3 of soil, at depths of 40 to 80 cm. Yield per tree, germinated nut percentage, fruit size and kernel percentage were evaluated during the production cycles of 2016 and 2017 production cycles.Results and discussion: During the two production cycles, when soil moisture level increased from 0.257 to 0.380 m3∙m-3, nut yield per tree, fruit length and diameter, and kernel percentage increased on average 23.8 %, 25.3 and 10 %, and 1.8 %, respectively; however, vivipary increased 11.2 %, which was reflected in the decrease of commercial pecan nut percentage. Treatments 0.327 and 0.380 m3∙m-3 had a similar effect (P > 0.05) on these variables.Conclusions: The lower moisture level (0.257 m3∙m-3), starting at the kernel filling stage, decreased vivipary and increased commercial kernel percentage.