Embryonic development and larval stages of Steindachneridion parahybae (Siluriformes: Pimelodidae): implications for the conservation and rearing of this endangered Neotropical species

Abstract

Steindachneridion parahybae is a freshwater catfish endemic to the Paraíba do Sul River and is classified as an endangered Neotropical species. An increasing number of conservation biologists are incorporating morphological and physiological research data to help conservation managers in rescue these endangered species. This study investigated the embryonic and larval development of S. parahybae in captivity, with emphasis in major events during the ontogeny of S. parahybae. Broodstocks were artificially induced to reproduce, and the extrusion occurred 200-255 degree-hours after hormonal induction at 24°C. Larval ontogeny was evaluated every 10 minutes under microscopic/stereomicroscopic using fresh eggs samples. The main embryogenic development stages were identified: zygote, cleavage, including the morula, blastula, gastrula phase, organogenesis, and hatching. The extruded oocytes showed an average diameter of 1.10 ± 0.10 mm, and after fertilization and hydration of eggs, the average diameter of eggs increased to about 1.90 ± 0.60 mm, characterized by a large perivitelline space that persisted up to embryo development, the double chorion, and the poles (animal and vegetative). Cell division started about 2 minutes after fertilization (AF), resulting in 2, 4, 8 (4 x 2 arrangement of cells), 16 (4 x 4), 32 (4 x 8) and 64 (2 x 4 x 8) cells. Furthermore, the blastula and gastrula stages followed after these cells divisions. The closed blastopore occurred at 11 h 20 min AF; following the development, the organogenetic stages were identified and subdivided respectively in: early segmentation phase and late segmentation phase. In the early segmentation phase, there was the establishment of the embryonic axis, and it was possible to distinguish between the cephalic and caudal regions; somites, and the optic vesicles developed about 20 h AF. Total hatching occurred at 54 h AF, and the larvae average length was 4.30 ± 0.70 mm. Gradual yolk sac reduction was observed during the first two days of larval development. The first feeding occurred at the end of the second day. During the larval phase, cannibalism, heterogeneous larval growth and photophobia were also observed. This information will be important in improving the artificial reproduction protocols of S. parahybae in controlled breeding programs.Steindachneridion parahybae é um bagre de água doce, endêmico do rio Paraíba do Sul e é classificado como espécie neotropical ameaçada. Um número crescente de biólogos conservacionistas estão incorporando dados de pesquisas morfológicas e fisiológicas para ajudar os gestores de conservação no resgate destas espécies ameaçadas de extinção. Este estudo investigou o desenvolvimento embrionário e larval de S. parahybae em cativeiro, com ênfase nos principais eventos durante a ontogenia de S. parahybae. Reprodutores foram artificialmente induzidos à reprodução e a extrusão ocorreu com 200-255 horas-graus após a indução hormonal a 24°C. A ontogenia larval foi avaliada a cada 10 minutos sob microscópio/ estereomicroscópio, utiliz...

Inseminating dose and water volume applied to the artificial fertilization of Steindachneridion parahybae (Steindachner, 1877) (Siluriformes: Pimelodidae): Brazilian endangered fish

“…Eleven hours after the fertilization, corresponding to the end of the epibolic movement or closure of the blastoporus (Honji et al, 2012), the percentage of fertilized eggs was estimated based on the count of all the eggs from each experimental unit. The translucid eggs that presented an apparently normal embryonic development were considered as fertilized, and the unfertilized eggs (=addled) were opaque or white.…”

Desenvolvimento embrionário, larval e juvenil de Hemisorubim platyrhynchos (Siluriformes, Pimelodidae) da bacia do rio Paraná

“…Estudos realizados por luz et al (2001) com Pimelodus maculatus Lacépède, 1803 mostraram que a diferenciação do embrião ocorre após 10h50min, a uma temperatura de 23,1 ± 0,5°C, semelhante ao tempo observado por Honji et al (2012) para Steindachneridion parahybae (Steindachner, 1897) (23,8 ± 0,8°C). Por outro lado, nakatani et al (2001) reportaram diferenciação do embrião de P. corruscans a partir das 3h15 min e o desprendimento da cauda ocorre após 7h, enquanto lanDines et al (2003) relataram para a mesma espécie o fechamento do blastóporo 5h após a fertilização e o desprendimento da cauda após 14h, com temperatura média de 26,5 ± 0,4°C.…”

“…Descrições do desenvolvimento embrionário e/ou larval foram feitas para espécies de peixes de diferentes bacias hidrográficas brasileiras (nascimento & araújo-lima, 1993;nakatani et al, 1997caviccHioli et al, 1997;Bialetzki et al, 1998Bialetzki et al, , 2008sancHes et al, 1999;reynaltetataje et al, 2001;luz et al, 2001;sousa & severi, 2002;reynalte-tataje et al, 2004;maciel et al, 2009;oliveira et al, 2012;Honji et al, 2012). Hemisorubim platyrhynchos (Valenciennes, 1840), popularmente conhecida como jurupoca, é uma espécie de médio porte, pertencente à família Pimelodidae e tem ocorrência nos grandes rios da América do Sul, nas bacias dos rios Amazonas, Maroni, Orinoco e Paraná (reis et al, 2003).…”

Biodiversidade e conservação da ictiofauna ameaçada de extinção da bacia do rio Paraíba do Sul

“…Nós temos avançado no entendimento dos aspectos fundamentais da biologia reprodutiva e do desenvolvimento de S. parahybae em cativeiro. Estudos de Caneppele et al (2009) e Honji et al (2013, estabeleceram o protocolo de indução artificial à reprodução de S. parahybae em cativeiro (respectivamente, de reprodutores selvagens e de origem de cativeiro (F1)); desenvolvimento embrionário e larval (Honji et al, 2012a;Lopes et al, 2015), e a qualidade dos gametas de S. parahybae tem sido descrito também (Honji, 2011;Sanches et al, 2013Sanches et al, , 2014Sanches et al, , 2015Caneppele et al, 2015;Okawara et al, 2015). A reprodução dessa espécie em cativeiro ocorre entre novembro e março, apresentando desenvolvimento oocitá-rio sincrônico, no entanto, durante o período reprodutivo apresenta uma desova em diferentes grupos, ou seja, entre os meses de novembro e março, as fêmeas de S. parahybae podem desovar várias vezes durante o período reprodutivo (Honji, 2011).…”