Nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy is rapidly gaining importance in mixture analysis, originally driven by the pharmaceutical and nowadays also by clinical applications within metabonomics. Quality control of food-related material has very similar requirements, as it also deals with mixtures, and many of the compounds found in body fluids are analyzed as well. NMR allows analysis in two ways within one experiment: namely, targeted and untargeted. Targeted stands for the safe identification and consequent quantification of individual compounds, whereas untargeted means the detection of all deviations visible by NMR using statistical analysis based on normality models. Very important is the stability and reproducibility of the NMR instrumentation used, and this means inherent minimized system internal variance. NMR is especially suited for such requirements, as it allows detection of the smallest concentration changes of many metabolites simultaneously. High-throughput flow-injection NMR as the basis for fruit juice screening allows low cost per sample and delivers substantially more relevant information than any other method and is probably the only method to produce such results.

With SGF Profiling™ we introduce an NMR-based screening method for the quality control of fruit juices. This method has been developed in a joint effort by Bruker BioSpin GmbH and SGF International e.V. The system is fully automated with respect to sample transfer, measurement, data analysis and reporting and is set up on an Avance 400 MHz flow-injection NMR spectrometer. For each fruit juice a multitude of parameters related to quality and authenticity are evaluated simultaneously from a single data set acquired within a few minutes. This multimarker/multi-aspect NMR screening approach features low cost-per-sample and is highly competitive with conventional and targeted fruit juice quality control methods.

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Seit der Entdeckung des Vitamincharakters der Tocopherole im Jahre 1922 durch Evans u. a. [3] ist eine Vielzahl von Methoden zu ihrer qualitativen und quantitativen Bestimmung beschrieben worden. Vor allem in den letzten Jahren erlebten dabei die physikalischen und chromatographischen Methoden infolge der Verbesserung der Analysentechnik einen beträchtlichen Aufschwung.Unter den vielfältigen chemischen Bestimmungsmethoden, die auf der leichten Oxydierbarkeit des Tocopherols beruhen und sich lediglich in der Wahl der Oxydationsmittel und der quantitativen Erfassung der dabei entstehenden Reaktionsprodukte unterscheiden, kristallisierte sich das klassische Emmerie/Engel‐Verfahren (Reaktion mit Eisen(III)‐chlorid und Erfassung der entstehenden Eisen(II)‐ionen als Dipyridylkomplex) als ein häufig verwendetes und zuverlässiges Verfahren heraus. Durch Modifizierung, z. B. Kopplung mit der Dünnschichtchromatographie [4,6] und veränderte Aufarbeitungsschritte (z. B. [8]), wurde diese Methode auf die verschiedensten tocopherolhaltigen Substrate anwendbar. In der Routineanalytik setzen sich jedoch vor allem die GLC und HPLC zur qualitativen und quantitativen Tocopherolbestimmung durch. Ihre Vorteile liegen im geringen Aufwand für die Probenvorbereitung und der kurzen Analysenzeit bei hoher Trennleistung. Die Tocopherolbestimmung nach Jáky mit vorgeschalteter Dünnschichtchromatographie [6] ist für Konzentrationsbereiche von 400–800 ppm Tocopherole in pflanzlichen Ölen, wie Erfahrungen von Franzke u. a. [4] zeigen, sehr gut geeignet (Wiederfindung 88,1 ± 6,8%). Soll der Tocopherolgehalt aber in tocopherolangereicherten Proben bestimmt werden, versagt diese Methode. Aus diesem Grunde wurde nach einem einfachen Verfahren gesucht, das die Bestimmung höherer Tocopherolkonzentrationen mit guter Empfindlichkeit ermöglicht. Für diesen Zweck scheint die UV‐Photometrie geeignet zu sein, da die Tocopherole im Bereich zwischen 292 und 298 nm absorbieren. So bestimmt Indyk [5] die Vitamine A, E und β‐Caroten in Milchpulver durch UV‐Spektrophotometrie. Die quantitative UV‐spektroskopische Bestimmung der einzelnen Tocopherolhomologen im Standardgemisch (α‐, β‐, γ‐, δ‐Tocopherol) führen Bukovits u. a. [1] durch Bildung der 2. Ableitung der UV‐Spektren der einzelnen Homologen durch.