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Acinetobacter baumannii has been associated with antimicrobial resistance and ability to form biofilms. Furthermore, its adherence to host cells is an important factor to the colonization process. Therefore, this study intended to identify some virulence factors that can explain the success of A. baumannii in causing nosocomial infections. We studied 92 A. baumannii isolates collected from hospitals in Rio de Janeiro, Brazil. Isolates were identified and the susceptibility to antimicrobials was determined. Oxacilinase type β-lactamase encoding genes were amplified by polymerase chain reaction, and genetic diversity was investigated by pulsed-field gel electrophoresis (PFGE). In addition, biofilm formation on polystyrene plates using crystal violet staining was quantified, and adherence to human cell lines was evaluated. Eighty-six isolates were multidrug-resistant, of which 93% were carbapenem-resistant. All isolates had the bla OXA-51 gene and 94% had the bla OXA-23 gene, other searched bla OXA genes were not detected. PFGE typing showed two predominant clones, and biofilm production was observed in 79% of isolates. A. baumannii isolates adhered better to HEp-2 cell compared with A-549 cell. Clones A, B, E, and F showed a significantly increased adherence to HEp-2 compared with adherence to A-549 cell. Our findings revealed that A. baumannii isolates had high frequencies of resistance to antimicrobial agents, ability to form biofilm, and capacity to adhere to HEp-2 cells.

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Resumo O objetivo deste estudo foi avaliar as condições higiênico-sanitárias e o perfil da comunidade microbiana dos utensílios e das mesas de um serviço de alimentação localizado no município do Rio de Janeiro. A caracterização do processo de higienização dos utensílios (pratos, bandejas e talheres) e das mesas foi realizada por observação sistemática. Verificou-se que os utensílios eram lavados em máquina de lavar e as mesas, manualmente. Após a higienização, os utensílios apresentavam umidade e resíduos de alimentos. Pelo método dependente de cultivo, foram analisadas 126 amostras higienizadas (utensílios: n=90 e mesas: n=36). Pesquisaram-se bactérias mesófilas, coliformes, Escherichia coli, Staphylococcus aureus e fungos. Das amostras analisadas, 100% dos utensílios e 80% das mesas apresentaram contagens microbianas superiores ao recomendado na literatura, estando em condições higiênico-sanitárias inadequadas. E. coli foi isolada nos utensílios e S. aureus, nas mesas. Pelos métodos independentes de cultivo (PCR-DGGE e sequenciamento da subunidade 16S do rRNA), foram analisadas 36 amostras (utensílios: n=27 e mesas: n=9). Klebsiella sp. e Acinetobacter sp. Foram detectadas em todas as amostras, Citrobacter sp. sobre as mesas e Aeromonas hydrophila, nos talheres. Houve falha no processo de higienização, que foi confirmada pelas análises realizadas, que evidenciaram a presença de microrganismos indicadores e patogênicos, que podem causar a perda da qualidade das refeições, assim como danos à saúde dos comensais. Desta forma, é necessário adequar o processo de higienização, a fim de minimizar o risco de contaminação e o surto de doenças transmitidas por alimentos (DTA).