In vitro propagation of an adult tree Wrightia tomentosa through enhanced axillary branching

Purohit, S. D.; Kukda, G.; Sharma, Priyanka; Tak, K.

doi:10.1016/0168-9452(94)03954-2

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“…1c) were obtained from single nodal explants after 18-19 weeks of culture (data not shown). The multiplication rate is higher than reported in other studies (Purohit and Tak, 1992;Hossain et al, 1994;Hiregoudar et al, 2003). After three subcultures the shoot multiplication rate declined.…”

Section: Shoot Inductioncontrasting

confidence: 53%

Micropropagation of Ocimum kilimandscharicum Guerke (Labiatae)

Saha¹,

Dey²,

Ghosh³

2010

Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica

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An efficient plant regeneration protocol has been developed from nodal explants of Ocimum kilimandscharicum Guerke, a medicinally important herbaceous plant species belonging to the family Lamiaceae. Axillary shoot bud proliferation was initiated from nodal explants cultured on MS medium supplemented with various concentrations of 6-benzyladenine (BA) (0.5-3.0 mg/l), kinetin (KN) (0.5-3.0 mg/l) and 2-isoPentenyladenine (2-iP) (0.5-3.0 mg/l). The maximum number of shoots (6.09±0.05), with average length 3.83±0.11 cm, was achieved with medium containing 1.0 mg/l BA. Shoot culture was established by repeated subculturing of the original nodal explants on shoot multiplication medium after each harvest of newly formed shoots. In this way, 20-30 shoots were obtained from a single nodal explant after 5 months. Rooting of shoots was achieved on half-strength MS medium supplemented with 1.5 mg/1 Indole-3-butyric acid (IBA) and 2% sucrose. Well-developed plantlets transferred to plastic pots containing soil and vermiculite (1:1) showed 81.13% survival. The genetic fidelity of in-vitro-raised field-grown plants to the donor plant was ascertained from random amplified polymorphic DNA (RAPD) markers. This protocol can be used for commercial propagation and for future genetic improvement studies.K Ke ey y w wo or rd ds s: : Ocimum kilimandscharicum, nodal segments, in vitro propagation, genetic fidelity.

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Section: Shoot Inductioncontrasting

confidence: 53%

Micropropagation of Ocimum kilimandscharicum Guerke (Labiatae)

Saha¹,

Dey²,

Ghosh³

2010

Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica

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“…A peroba-rosa demonstrou ser sensível às concentrações elevadas das soluções desinfestantes e ao tempo de tratamento, sendo utilizadas concentrações mais reduzidas de NaOCl e HgCl 2 do que as utilizadas em muitas espécies lenhosas, como: Maytenus ilicifolia (PEREIRA et al, 1995), Cercis canadensis (MACKAY et al, 1995), Miscanthus sinensis (NIELSSEN et al, 1993), Hemidesmus indius (PATNAIK e DEBATA, 1996) e Wrightia tomentosa (PUROHIT et al, 1994).…”

Section: Estabelecimento De Culturas Assépticasunclassified

“…Esse produto vêm sendo utilizado, com sucesso, para muitas espécies lenhosas que apresentaram sérios problemas de contaminação por microrganismos, como já relatado por Chalupa (1990), Purohit et al (1994) e Patnaik e Debata (1996).…”

Section: Estabelecimento De Culturas Assépticasunclassified

“…Em outras espécies como Cercis canadensis (MACKAY et al, 1995), Dalbergia latifolia (RAI e CHANDRA, 1989) e Morus australis (PATTNAIK et al,1996), o número médio de brotações por explante também aumentou com as concentrações crescentes de BAP até 4,4 µM. Resultados semelhantes aos do presente trabalho também foram obtidos com segmentos nodais de Wrightia tomentosa (Apocynaceae) (PUROHIT et al, 1994) e Sterculia urens (PUROHIT e DAVE, 1996), cultivados em meio de cultura MS acrescido de 8,8 µM de BAP. Segundo os primeiros autores, a concentração de 8,8 µM de BAP foi necessária durante o estabelecimento da cultura, para a quebra de dominância apical e a indução de brotações.…”

Section: Indução De Brotações Múltiplasunclassified

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Micropropagação de Aspidosperma polyneuron (peroba-rosa) a partir de segmentos nodais de mudas juvenis

Ribas¹,

Zanette²,

Kulchetscki³

et al. 2005

Rev. Árvore

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O presente trabalho teve como objetivo o estabelecimento de um protocolo de regeneração in vitro de mudas de Aspidosperma polyneuron (peroba-rosa), a partir de segmentos nodais de material juvenil. Brotações apicais de mudas de dois anos de idade foram desinfestadas com 0,25% de hipoclorito de sódio ou 0,05% de cloreto de mercúrio, durante 10 min, visando ao estabelecimento de culturas assépticas. A indução de brotações múltiplas foi realizada em meio de cultura WPM, suplementado com BAP, ZEA ou CIN (2,2-8,8 miM), no cultivo inicial e nos dois subcultivos subseqüentes. Para indução de brotações alongadas foram testadas as combinações de fitorreguladores: 2,25 miM de BAP, ZEA ou CIN, associadas com 1,25 miM de AIB. A indução de raízes foi avaliada com tratamentos em soluções de AIB (2,5-10 mM), durante 5 ou 15 min. As mudas enraizadas foram transplantadas para casa de vegetação. A desinfestação das brotações apicais foi eficiente com 0,25% de NaOCl ou 0,05% de HgCl2, durante 10 min, obtendo-se 72,89 e 84,10% de sobrevivência, respectivamente. As maiores taxas médias de regeneração de brotações axilares (4 a 5) foram obtidas em meio de cultura suplementado com ZEA ou BAP (4,4-8,8 miM), após o segundo subcultivo. Concentrações mais reduzidas de BAP ou ZEA (2,25 miM) e 1,25 miM de AIB proporcionaram, em média, três brotações mais alongadas (1,5-2,5 cm de comprimento). Tratamentos com soluções de 10 mM de AIB, durante 15 min, foram eficientes na indução de raízes (80%), e as mudas transplantadas apresentaram taxas de sobrevivência superiores a 90% em casa de vegetação.

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“…No entanto, por ser um produto tóxico, deve ser utilizado com muita cautela (George, 1993). Esse produto vem sendo utilizado, com sucesso, para muitas espécies lenhosas que apresentavam sérios problemas de contaminação por microorganismos como relatado por Bennett e Davies JR. (1986), Chalupa (1990), Purohit et al (1994) e Patnaik e Debata (1996).…”

Section: Tabela 5: Influência Da Estação Do Ano Na Contaminação Fúngiunclassified

Estabelecimento de culturas assépticas de <i>Aspidosperma polyneuron</i>.

Ribas

Zanette²,

Kulchetscki³

et al. 2005

Ciênc. Florest.

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O presente trabalho objetivou estabelecer um protocolo para obtenção de culturas assépticas de Aspidosperma polyneuron visando à regeneração in vitro de mudas dessa espécie. Brotações apicais de mudas de dois anos de idade foram coletadas em casa de vegetação e desinfestadas com hipoclorito de sódio (NaOCl) ou cloreto de mercúrio (HgCl2) visando ao estabelecimento de culturas assépticas. Os tratamentos testados com NaOCl foram: solução 0,125 ou 0,25%, durante cinco ou dez minutos e com HgCl2: 0,025; 0,05 ou 0,1%, durante cinco ou dez minutos e em todas as estações do ano. As avaliações das percentagens de necrose, contaminação fúngica, contaminação bacteriana e de sobrevivência foram feitas após três semanas. Os resultados revelaram que o tratamento com solução de NaOCl a 0,25%, durante 10 minutos, resultou em 70% de sobrevivência para brotações apicais, independente da época do ano (verão e outono). O HgCl2 foi mais eficiente que o NaOCl na desinfestação de brotações apicais de peroba-rosa, sendo recomendado o tratamento de 0,05% de HgCl2, durante 10 minutos (84,10% de sobrevivência). Em todas as estações do ano, foram estabelecidas culturas assépticas, contudo, os melhores resultados foram obtidos na primavera e verão.

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In vitro propagation of an adult tree Wrightia tomentosa through enhanced axillary branching

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Micropropagation of Ocimum kilimandscharicum Guerke (Labiatae)

Micropropagation of Ocimum kilimandscharicum Guerke (Labiatae)

Micropropagação de Aspidosperma polyneuron (peroba-rosa) a partir de segmentos nodais de mudas juvenis

Estabelecimento de culturas assépticas de <i>Aspidosperma polyneuron</i>.

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