Ex Vitro Effects in Micropropagation of Syringa L.

Waldenmaier, S.; Bünemann, G.

doi:10.17660/actahortic.1992.300.29

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“…De plus, les plants maintenus à l'extérieur ont tendance à être plus difficile à aseptiser à la fin de la saison de croissance qu'au début de celle-ci (Brassard, communication personnelle). Les problèmes de contamination mentionnés dans la littérature sur le lilas permettent de supposer de l'inadéquation des techniques d'aseptisation des explants, surtout que la description de ces techniques est souvent incomplète (Hildebrandt 1986) ou omise (Waldenmaier et Bünemann 1991;Refouvelet et al 1998) et que leur efficacité est rarement discutée. Les récents travaux de Al-Khalifah (2000) ont toutefois rapporté l'excellent potentiel de désinfection du virucide Virkon MC sur le palmier.…”

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Multiplication in vitro de Syringa vulgaris ‘Katherine Havemeyer’ et ‘Charles Joly’

Richer¹

2004

Can. J. Plant Sci.

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. Explants and subsequent cultures growth were improved when the cytokinin 2iPA was present in the culture medium during initiation and multiplication stage for both cultivars. Explant density had little effect on growth during the initiation stage while a density of four explants per container gave the best results during the multiplication stage. Rooting and acclimatization were successfully combined into a single step to quickly produce rooted, acclimatized transplants. The optimization of several production steps for mass propagation of the French hybrid lilacs Katherine Havemeyer and Charles Joly makes the proposed procedure an interesting way to maximize the use of staff and equipment year round.Key words: Micropropagation, growth regulator, sterilisation La rusticité et la popularité du lilas représentent des atouts favorables au développement de son potentiel commercial. Cependant, la multiplication par bouturage conventionnel comporte des difficultés d'enracinement (Hartmann et al. 1997), ce qui en limite la disponibilité sur le marché, justifiant le recours à la micropropagation pour obtenir de grandes quantités de matériel végétal. Cependant, même si cette technique permet la production de plantules de lilas de qualité (Lima et Ticknor 1986), elle doit être adaptée selon les cultivars (Hildebrandt 1986, Lima et Ticknor 1986 et mise au point à l'échelle commerciale (Refouvelet et al. 1998) pour en assurer la rentabilité. La mise en culture d'explants, effectuée pendant toute l'année, requiert un approvisionnement constant de pieds-mères. Ainsi pour le lilas, une poussé unique de croissance se produit au printemps (Hartmann et al. 1997). De nombreuses études mettent en évidence le thermopériodisme (Went 1953) et l'importance de briser la dormance des bourgeons pour les plantes ligneuses dans les zones à climat tempéré (Weinberger 1950). Pour le lilas, il faut contrôler la température d'entreposage afin de lever la dormance et de provoquer le débour-rement des bourgeons végétatifs à volonté (Leopold et Kriedmann 1975). Hildebrandt (1986) a rapporté qu'un séjour prolongé en serre ou en chambre froide serait à l'origine de certains problèmes de contamination lors de la mise en culture des explants de lilas. De plus, les plants maintenus à l'extérieur ont tendance à être plus difficile à aseptiser à la fin de la saison de croissance qu'au début de celle-ci (Brassard, communication personnelle (Hildebrandt et Harney 1983; Einset et Alexander 1985; Hilderbrandt 1986;Welander 1987;Pierik et al. 1988). Pour les auxines, l'AIA a varié de 0,01 à 0,50 mg L -1 , l'AIB et l'ANA de 0,01 à 0,10 mg L -1 . Pour le cytokinines, la 2iP a varié de 0,5 à 3,0 mg L -1 , la BAP de 0,1 à 3,0, le TZD 2 mg L -1 et la zéatine de 0,1 à 1,0 mg L -1 . Le choix du type d'explant ne fait pas l'unanimité : des sections de tige avec noeuds (Einset et Alexander III 1985;Welander 1987; Pierick et al. 1988), des sections de tiges avec apex (Pierick et al. 1988) et des bourgeons axillaires (Hildebrandt et Harney 1983;Gabryszewska 1989; Wa...

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Multiplication in vitro de Syringa vulgaris ‘Katherine Havemeyer’ et ‘Charles Joly’

Richer¹

2004

Can. J. Plant Sci.

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Shoot multiplication of Syringa reticulata var. mandshurica from in vitro cultured seedlings

Liu

Yang

et al. 2016

J. For. Res.

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We developed a shoot multiplication protocol for Syringa reticulata Blume var. mandshurica Hara from in vitro cultured seedlings that derived from in vitro germinated seeds. The shoots could be induced on Murashige and Skoog (MS) medium with proper plant growth regulator combinations of 6-benzylaminopurine (BA) and indole-3-butyric acid (IBA). The better medium for shoot multiplication and growth was MS ? 5 mg L -1 BA ? 0.5 mg L -1 IBA ? 20 g L -1 sucrose ? 7 g L -1 agar, and the corresponding shoot induction rate was 75 %. The plantlets grew well after rooting on 1/2MS medium (macro-elements of MS medium are at half-strength) supplemented with 1 mg L -1 IBA, and the survival percentage was [80 % at 16 weeks after transplanting.

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Ex Vitro Effects in Micropropagation of Syringa L.

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Multiplication in vitro de Syringa vulgaris ‘Katherine Havemeyer’ et ‘Charles Joly’

Multiplication in vitro de Syringa vulgaris ‘Katherine Havemeyer’ et ‘Charles Joly’

Shoot multiplication of Syringa reticulata var. mandshurica from in vitro cultured seedlings

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