Detection of Intraocular Antibody Production to Herpesviruses in Acute Retinal Necrosis Syndrome

Boer, Joke H. de; Luyendijk, L.; Rothová, Aniki; Baarsma, G. S.; Jong, Paulus T. V. M. de; Bollemeijer, Jan-Geert; Rademakers, A.J.J.M.; Lelij, Allegonda Van der; Zaal, Michel J. W.; Kijlstra, Aize

doi:10.1016/s0002-9394(14)73077-6

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“…Es traten lediglich bei 5 Augen "Rezi-nen stellen jedoch lediglich Epiphänomene ohne pathogenetisch wirksame Effektivität dar (Kalden 1994 Die intraokulare Antikörperproduktion wird von manchen Autoren als Beweis für eine intraokulare Infektion angesehen (Remky 1961, Witmer 1962, Desmonts 1973, Witmer 1978, Hartmann et al 1991, Baarsma et al 1991, De Boer et al 1994, Abe et al 1996, Remky 1998, Lightman und Towler 1998, andere fordern den Erregernachweis in den erkrankten Augen (Bryans 1955, Schebitz und Dedié 1955, Thiermann 1984, Kalsow und Dwyer 1997.…”

Section: Rezidivfreiheit Nach Vitrektomieunclassified

Etiology of equine recurrent uveitis (ERU): Autoimmune disease or intraocular leptospiral infection?

Wollanke¹,

Gerhards²,

Brem³

et al. 2004

PHK

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ZusammenfassungDie Literatur zur Ätiologie der equinen rezidivierenden Uveitis (ERU) erscheint seit Jahrzehnten verwirrend, da einerseits wegen nachweisbaren Autoimmunreaktionen eine "Autoimmunkrankheit" beschrieben wird, andererseits jedoch wiederholt Nachweise einer intraokularen Leptospireninfektion erfolgt sind. Die Etablierung der Vitrektomie bei an ERU erkrankten Pferden ermöglicht erstmals die routinemäßige Entnahme von Glaskörperproben aus vielen der betroffenen Augen. Diese im Rahmen der Vitrektomie gewonnen Glaskörperproben können sowohl zur Untersuchung auf zelluläre und humorale Autoimmunphänomene als auch zu mikrobiologischen Studien verwendet werden und zur Klärung der Ätiologie und Pathogenese der ERU dienen. Neben Serumproben von 724 an ERU erkrankten und von 132 augengesunden Pferden konnten von 1998 bis 2001 bei Vitrektomien von 426 eindeutig an ERU erkrankten Augen unverdünnte Glaskörperproben unter sterilen Kautelen entnommen werden. Als Kontrolle dienten 54 Glaskörperproben aus gesunden Pferdeaugen. Alle Proben (Serum und Glaskörper) wurden mittels Mikroagglutinationsreaktion (MAR) auf Antikörper gegen Leptospiren getestet. Für die Berechnung des Goldmann-Witmer-Koeffizienten (C) wurden bei 36 Glaskörper-und Serumprobenpaaren Elektrophoresen durchgeführt. Zur Anzüchtung von Leptospiren wurden 41 Glaskörperproben aus gesunden und 358 Glaskörperproben aus an ERU erkrankten Augen kultiviert. Von den Glaskörperproben aus an ERU erkrankten Augen wurden zudem 55 mittels PCR auf Leptospiren-DNA untersucht. Aus 6 vitrektomierten Augen konnten in unterschiedlichen Abständen nach der Operation erneut Proben entnommen und mittels MAR untersucht werden. Der Krankheitsverlauf von 150 der operierten Pferdeaugen wurde im Mittel bis 2,7 Jahre nach der Vitrektomie weiter verfolgt. Zwischen Höhe und Vorkommen von Antikörpertitern gegen Leptospiren im Serum von augengesunden und an ERU erkrankten Pferden bestand ein geringer, jedoch nicht signifikanter Unterschied. Die MAR konnte in 3/54 (6 %) der Glaskörperproben aus gesunden Pferdeaugen sowie in 382/426 (90 %) der Glaskörperproben aus an ERU erkrankten Augen Antikörper gegen Leptospiren nachweisen. Die Berechnung des Goldmann-Witmer-Koeffizienten konnte für 34/36 (94 %) der Probenpaare eine intraokulare Antikörperproduktion nachweisen (C > 8). In 189/358 (53 %) Glaskörperproben aus an ERU erkrankten Pferdeaugen und in keiner der 41 Glaskörperproben aus gesunden Augen konnten kulturell Leptospiren nachgewiesen werden. Die positiven Kulturergebnisse konnten sowohl aus Augen erzielt werden, die erst wenige Wochen erkrankt waren, als auch aus Augen, die schon über viele Jahre rezidivierende Entzündungen gehabt hatten. Bei 18/189 (9,5 %) der Serum-und Glaskörperprobenpaare mit positivem Kulturbefund in den Glaskörperproben konnten in den zugehörigen Serumproben keine Antikörper gegen Leptospiren mehr nachgewiesen werden. Die Polymerase-Ketten-Reaktion (PCR) wies in 39/55 (71 %) Glaskörperproben aus an ERU erkrankten Augen Leptospiren-DNA nach. In den 6 Glaskörper...

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Section: Rezidivfreiheit Nach Vitrektomieunclassified

Etiology of equine recurrent uveitis (ERU): Autoimmune disease or intraocular leptospiral infection?

Wollanke¹,

Gerhards²,

Brem³

et al. 2004

PHK

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“…3,17 The GWC was considered positive when its value exceeded 3. 11,18 None of the samples was inhibited during PCR analysis or were unable to be analyzed for the presence of antibody. Of the 56 samples, 27 were analyzed at the NORI and 29 at the UMCU.…”

mentioning

confidence: 99%

Infectious Uveitis in Immunocompromised Patients and the Diagnostic Value of Polymerase Chain Reaction and Goldmann-Witmer Coefficient in Aqueous Analysis

Westeneng¹,

Rothová²,

Boer³

et al. 2007

American Journal of Ophthalmology

Self Cite

112

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• PURPOSE: To establish the causes of uveitis in immunocompromised patients and to determine the contribution of polymerase chain reaction (PCR) and Goldmann-Witmer coefficient (GWC) analysis of aqueous humor in patients with an infectious etiology.• DESIGN: Retrospective case series of 56 consecutive immunocompromised patients with uveitis.• METHODS: All patients underwent full ophthalmologic examination and laboratory blood analysis for uveitis. Aqueous humor analyses were performed using PCR and GWC for cytomegalovirus (CMV), herpes simplex virus (HSV), varicella zoster virus (VZV), and Toxoplasma gondii.• RESULTS: Of 56 immunocompromised patients, 43 (77%), all posterior and panuveitis, had intraocular infections. Twenty-one (49%) had CMV, three (7%) had VZV, 11 (26%) had T. gondii, six (14%) had Treponema pallidum, and one (2%) each had Aspergillus and Candida. In AIDS patients, CMV was the most common cause. A strong correlation between AIDS and ocular syphilis was also observed (P ‫؍‬ .007). In non-AIDS immunocompromised patients, T. gondii was most frequently detected. Twenty-seven patients were examined by both PCR and GWC; five (18.5%) were positive by both assays, 15 (55.5%) were positive by PCR alone and seven (26%) by GWC alone. Viral infections were detected by PCR in 16 of 17 (94%) cases; T. gondii in four of 10 (40%) patients. Using GWC, a viral infection was diagnosed in three of 17 (18%) and T. gondii in nine of 10 (90%) cases.

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“…For this reason, cultures of samples from the virtually cell-free aqueous and vitreous compartments are negative; therefore, such means cannot be used to establish viral etiology [9,11,12]. However, analysis of paired aqueous and serum samples for the existence of specific antibodies has led to successful diagnoses in 65% of cases [13][14][15]; if this procedure is carried out on a sequential basis, 72%-86% of cases may be successfully diagnosed [16].…”

mentioning

confidence: 99%

Varicella-Zoster Virus Is Strongly Associated with Atypical Necrotizing Herpetic Retinopathies

Garweg

Böhnke

1997

Clinical Infectious Diseases

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Aqueous humor samples from nine patients with atypical necrotizing retinopathies of suspected viral origin, six with acute retinal necrosis syndrome (ARN), and 17 with active cytomegalovirus (CMV) retinitis underwent amplification for viral DNA of herpes simplex virus type 1 (HSV-1), varicella-zoster virus (VZV), and human CMV. VZV DNA was detected in seven of the nine aqueous humor samples from patients with atypical necrotizing retinopathies of suspected viral origin and in four of the six samples from individuals with ARN; of the two other samples from patients with ARNS, no viral DNA was found in one, and both CMV DNA and HSV-1 DNA, but not VZV DNA, were detected in one (this patient presented with bilateral ARNS 2 months after being successfully treated for CMV retinitis). Thus, VZV is likely to be the main pathogen of atypical necrotizing herpetic retinopathies. DNA amplification may be used to establish an early, sensitive, and reliable diagnosis of any form of necrotizing retinopathy in 80% of cases, irrespective of viral etiology.

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Detection of Intraocular Antibody Production to Herpesviruses in Acute Retinal Necrosis Syndrome

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Etiology of equine recurrent uveitis (ERU): Autoimmune disease or intraocular leptospiral infection?

Infectious Uveitis in Immunocompromised Patients and the Diagnostic Value of Polymerase Chain Reaction and Goldmann-Witmer Coefficient in Aqueous Analysis

Varicella-Zoster Virus Is Strongly Associated with Atypical Necrotizing Herpetic Retinopathies

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