Search citation statements
Paper Sections
Citation Types
Year Published
Publication Types
Relationship
Authors
Journals
В данной работе был проведен сравнительный морфологический и биохимический анализ сохран-ности овариальной ткани при криоконсервирова-нии под защитой ДМСО в зависимости от концен-трации криопротектора и режима охлаждения.Установлено снижение количества нормаль-ных фолликулов на 20-30% на этапе инкубации после замораживания под защитой 3,0 М ДМСО (режим замораживания без инициации кристалло-образования), что обусловлено наличием латент-ных повреждений в структуре овариальной ткани в виду токсического действия данного криопротекто-ра. При использовании 1,5 М ДМСО независимо от режима замораживания (с и без инициации кри-сталлообразования) таковые повреждения отсут-ствовали, как после удаления криопротектора, так и последующей инкубации ткани. Это связано с равномерным проникновением ДМСО при 22°C по всему объему ткани, которое уменьшало действие механического фактора в процессе кристаллиза-ции. Полученные результаты свидетельствуют о том, что конечная концентрация ДМСО определя-ет степень повреждения структуры овариальной ткани в зависимости от режима замораживания-оттаивания. Следовательно, при криоконсервиро-вании овариальной ткани необходимо осуществ-лять подбор режима охлаждения в зависимости от типа и конечной концентрации криопротектора.Ключевые слова: криоконсервирование, ова-риальная ткань, ДМСО, нормальные фолликулы, ТБК-активные продукты.Связь работы с научными программами, планами, темами. Данная работа выполнялась в рамках государственных бюджетных тем ИПКиК НАН Украины «Свойства криоконсервированных первичных культур клеток эндокринных желез не-онатальных животных in vitro и in vivo при транс-плантации», шифр 2.2.6.104, № гос. регистрации 0116U003494.Введение. Криоконсервирование биологиче-ских объектов представляет собой многоэтапный процесс, который включает первоначальную экс-позицию клеток и тканей в растворах, содержащих криопротектор (КП), охлаждение до отрицательных температур, хранение, отогрев, и, наконец, удале-ние криопротектора. Сложность криоконсервиро-вания овариальной ткани связана с наличием плотных межклеточных контактов в структуре тка-ни, что приводит к неравномерной динамике про-никновения КП, аккумуляции жидкости в межкле-точном пространстве, объемным изменениям со-матических клеток и ооцита [15]. Для фрагментов овариальной ткани подбор композиционного соста-ва среды инкубации, типа и конечной концентра-ции КП осуществляется эмпирически на основании экспериментальных данных, полученных для ооци-тов и эмбрионов [8].В работах [3,14] показано, что при использова-нии существующих протоколов криоконсервирова-ния сохраняется целостность примордиальных фолликулов, тогда как строма овариальной ткани значительно повреждается кристаллами льда [1]. Предполагается, что уменьшение повреждающего действия механического фактора может быть дос-тигнуто за счет комплексного подхода: оптимиза-ции концентрации и типа криопротектора [3,14] в сочетании с эффективным режимом заморажи-вания.Цель работы. Исследовать сохранность фол-ликулов и динамику накопления ТБК-активных про-дуктов во фрагментах овариал...
В данной работе был проведен сравнительный морфологический и биохимический анализ сохран-ности овариальной ткани при криоконсервирова-нии под защитой ДМСО в зависимости от концен-трации криопротектора и режима охлаждения.Установлено снижение количества нормаль-ных фолликулов на 20-30% на этапе инкубации после замораживания под защитой 3,0 М ДМСО (режим замораживания без инициации кристалло-образования), что обусловлено наличием латент-ных повреждений в структуре овариальной ткани в виду токсического действия данного криопротекто-ра. При использовании 1,5 М ДМСО независимо от режима замораживания (с и без инициации кри-сталлообразования) таковые повреждения отсут-ствовали, как после удаления криопротектора, так и последующей инкубации ткани. Это связано с равномерным проникновением ДМСО при 22°C по всему объему ткани, которое уменьшало действие механического фактора в процессе кристаллиза-ции. Полученные результаты свидетельствуют о том, что конечная концентрация ДМСО определя-ет степень повреждения структуры овариальной ткани в зависимости от режима замораживания-оттаивания. Следовательно, при криоконсервиро-вании овариальной ткани необходимо осуществ-лять подбор режима охлаждения в зависимости от типа и конечной концентрации криопротектора.Ключевые слова: криоконсервирование, ова-риальная ткань, ДМСО, нормальные фолликулы, ТБК-активные продукты.Связь работы с научными программами, планами, темами. Данная работа выполнялась в рамках государственных бюджетных тем ИПКиК НАН Украины «Свойства криоконсервированных первичных культур клеток эндокринных желез не-онатальных животных in vitro и in vivo при транс-плантации», шифр 2.2.6.104, № гос. регистрации 0116U003494.Введение. Криоконсервирование биологиче-ских объектов представляет собой многоэтапный процесс, который включает первоначальную экс-позицию клеток и тканей в растворах, содержащих криопротектор (КП), охлаждение до отрицательных температур, хранение, отогрев, и, наконец, удале-ние криопротектора. Сложность криоконсервиро-вания овариальной ткани связана с наличием плотных межклеточных контактов в структуре тка-ни, что приводит к неравномерной динамике про-никновения КП, аккумуляции жидкости в межкле-точном пространстве, объемным изменениям со-матических клеток и ооцита [15]. Для фрагментов овариальной ткани подбор композиционного соста-ва среды инкубации, типа и конечной концентра-ции КП осуществляется эмпирически на основании экспериментальных данных, полученных для ооци-тов и эмбрионов [8].В работах [3,14] показано, что при использова-нии существующих протоколов криоконсервирова-ния сохраняется целостность примордиальных фолликулов, тогда как строма овариальной ткани значительно повреждается кристаллами льда [1]. Предполагается, что уменьшение повреждающего действия механического фактора может быть дос-тигнуто за счет комплексного подхода: оптимиза-ции концентрации и типа криопротектора [3,14] в сочетании с эффективным режимом заморажи-вания.Цель работы. Исследовать сохранность фол-ликулов и динамику накопления ТБК-активных про-дуктов во фрагментах овариал...
scite is a Brooklyn-based organization that helps researchers better discover and understand research articles through Smart Citations–citations that display the context of the citation and describe whether the article provides supporting or contrasting evidence. scite is used by students and researchers from around the world and is funded in part by the National Science Foundation and the National Institute on Drug Abuse of the National Institutes of Health.
hi@scite.ai
10624 S. Eastern Ave., Ste. A-614
Henderson, NV 89052, USA
Copyright © 2024 scite LLC. All rights reserved.
Made with 💙 for researchers
Part of the Research Solutions Family.