Microbial contamination is a major obstaclein clonal propagation of hevea (Heveabrasiliensis) through microcutting technology;therefore the ability to reduce contamination willdetermine the success of the application of thistechnology. The aim of experiments was toincrease healthy and survived plantlets by testingpre-sterilization agents for cleaning explantsduring pre-sterilization step, culture tubeclosures suitable for explants growth and anappropriate time for introducing explants at theprimary culture phase. The pre-sterilizationagents tested were aganol, alcohol anddesogerme, the culture tube closures used wereparafilm and cotton, and the time for culturingexplants were determined by using rubbergenotypes introduced during the year of 2006 and2007. The results show that desogermedecreased significantly the level of explantcontamination compared to aganol and alcohol,meanwhile the type of culture tube closure didnot affect the level of explant contamination. Thetype of culture tube closure influencedsignificantly the survival of explants where thenumber of survived explants in culture tubescovered with cotton was higher than that of withparafilm. Season also affected the contaminationfrequency of the explants. Higher number ofhealthy plantlets were obtained whenintroduction of the explants were conducted fromJune to October considered as dry season inBogor compared to introduction of the explantsduring rainy season from January to May.Different genotypes of rubber introduced at theprimary culture phase did not affect thepercentage of explant contamination.AbstrakKontaminasi oleh mikroba merupakanmasalah utama pada perbanyakan klonal tanamankaret (Hevea brasiliensis) melalui teknologimicrocutting sehingga kemampuan mengurangikontaminasi menentukan keberhasilan aplikasiteknologi tersebut. Penelitian ini bertujuanmempelajari pengaruh jenis bahan pra-sterilanyang efektif untuk pencucian eksplan tahap pra-sterilisasi, mempelajari pengaruh tutup tabungterhadap perkembangan eksplan serta meng-identifikasi waktu yang tepat untuk melaksanakanintroduksi eksplan pada tahap kultur primer(kultur awal) sehingga jumlah eksplan sehat dantumbuh dapat ditingkatkan. Bahan pra- sterilanyang diuji adalah aganol, alkohol dan desogerme,tutup tabung yang digunakan adalah parafilm dankapas, sedangkan identifikasi waktu kulturdilakukan melalui introduksi eksplan sepanjang tahun 2006 dan 2007 terhadap berbagai genotipetanaman karet yang tersedia. Hasil penelitianmenunjukkan bahwa desogerme menurunkansecara nyata tingkat kontaminasi eksplandibandingkan dengan aganol dan alkohol,sedangkan jenis tutup tabung tidak berpengaruhterhadap persentase kontaminasi. Jenis tutuptabung berpengaruh sangat nyata terhadappersentase eksplan yang hidup dan membentuktunas, di mana persentase eksplan membentuktunas pada tabung dengan tutup kapas lebih tinggidibandingkan dengan tutup parafilm. Musim jugasangat mempengaruhi tingkat kontaminasieksplan. Eksplan sehat jauh lebih banyakdiperoleh apabila penanaman eksplan dilakukanpada bulan Juni sampai Oktober, yang merupakanmusim kemarau di Bogor dibandingkan denganintroduksi eksplan pada bulan Januari sampaiMei, yang merupakan musim hujan. Jenisgenotipe yang ditanam pada tahap kultur primertidak berpengaruh terhadap persentasekontaminasi.
SummaryIn temporary immersion system (TIS),plant materials are exposed to the medium fora short time, therefore they are more exposedto the air and a lack of oxygen frequentlyexperienced by a liquid culture can be avoided.This experiment was conducted to determinethe procedure for callus proliferation up tosomatic embryo germination of oil palm(Elaeis guineensis Jacq.) in TIS culture.Embryogenic calli of oil palm clone MK 638from Marihat Research Institute were culturedon solid medium in the dark culture room andthen used as materials for TIS. Immersion timefor all cultures was three minutes every sixhours. Callus proliferation was conducted inDF liquid culture with 5 mg/L 2,4-D and0.1 mg/L kinetin with transfer interval of 4, 6and 8 weeks. The treatments for somaticembryo maturation were kinetin and ABA,whereas for somatic embryo germination wasIBA, kinetin and GA 3 . The results show thatthe best transfer interval for callus proli-feration was four weeks. In this treatment therelative growth rate of callus was0.38 g/g/week. Somatic embryo initiation fromthe callus was done in DF mediumsupplemented with 1 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/Lkinetin. The percentage of somatic embryowas 80% based on biomass fresh weight afterthe fourth subculture. The addition of 0.5 mg/Lkinetin and 0.05 mg/L ABA improved somaticembryo maturation of oil palm; the averagenumber of somatic embryos at advanced stages(torpedo and cotyledonary) was 16.3 embryosper flask. The addition of 2 mg/L IBA and0.5 mg/L kinetin in DF medium with half-strength macro-salt enhanced significantly thegermi-nation of somatic embryos. GA 3 at0.1 mg/L increased the total number ofgerminants.RingkasanPada sistem perendaman sesaat (SPS),bahan tanam hanya terpapar sebentar dalammedium sehingga paparan dengan udara lebihlama dan kekurangan oksigen yang seringterjadi pada kultur cair dapat diatasi. Penelitianini bertujuan menetapkan prosedur untukperbanyakan kalus embriogenik sampai denganperkecambahan embrio somatik kelapa sawit(Elaeis guineensis Jacq.) dalam kultur SPS.Kalus embriogenik kelapa sawit klon MK 638yang diperoleh dari Balai Penelitian Marihatdiperbanyak pada medium padat di ruang gelapyang kemudian digunakan sebagai bahan untukkultur cair SPS. Lama perendaman semuakultur di SPS diatur tiga menit denganfrekuensi setiap enam jam. Perbanyakan kalusdalam medium cair DF dengan 2,4-D 5 mg/Ldan kinetin 0,1 mg/L dilaksanakan denganinterval subkultur 4, 6 dan 8 minggu.Perlakuan pematangan embrio somatik adalahkinetin dan ABA sedangkan perlakuan untukperkecambahan embrio somatik adalah IBA,kinetin dan GA 3 . Hasil penelitian menunjuk-kan bahwa untuk proliferasi kalus embriogenikkelapa sawit, interval subkultur terbaik adalahempat minggu. Pada perlakuan ini laju tumbuhrelatif kalus mencapai 0,38 g/g/minggu.Inisiasi embrio somatik dari kalus dilakukanpada medium DF ditambah 2,4-D 1 mg/L dankinetin 0,1 mg/L. Persentase embrio somatikmencapai 80% dari total bobot basah biomassasetelah subkultur keempat. Penambahan kinetin0,5 mg/L dan ABA 0,05 mg/L meningkatkanpematangan embrio somatik kelapa sawit; rata-rata jumlah embrio somatik fase lanjut (torpedodan kotiledon) adalah 16,3 embrio per bejana.Penambahan IBA 2 mg/L dan kinetin 0,5 mg/Lpada medium DF dengan setengah garammakro meningkatkan perkecambahan embriosomatik secara nyata. GA 3 0,1 mg/L mening-katkan jumlah kecambah yang terbentuk.
In vitro culture through microcutting technology can be used for clonal propagation of rubber (Hevea brasiliensis Muell. Arg.) rootstocks. Acclimatization of in vitro plantlets to ex vitro conditions is a major bottleneck in the micropropagation of many plants.This research was conducted to study the effect of plastic cover closed period and media composition on the survival rate of rubber plantlets. Plantlets derived from microcutting were planted on plastic pots containing a mixture of soil, cocopeat, dung manure, and sand or zeolite. The plantlets were then placed inside a closed transparent plastic cover that opened after 2, 3, 4 and 6 weeks. The cover was placed under tree canopy. The second experiment used the same media composition with or without cocopeat and with sand or zeolite. At 1.5 month after culture, observation was done on the number of survived plantlets, plantlet height and the percentage of rooted plantlets. The results show that the best coverclosed period was six weeks and the best growing medium was a mixture of soil, cocopeat, dung manure, and zeolite (6:2:1:1v/v). On the two combined treatments, the survival rate was 73.3% after 1.5 month of acclimatization. The use of zeolite and a higher soil percentage gave positive influences on rubber plantlet survival rate. The second experiment results confirmed that the use of zeolite was better than sand and the use of cocopeat was definitely needed. It can be concluded that the best of acclimatization of rubber plantlets from microcutting was on a medium mixture of soil, cocopeat, dung manure, and zeolite (6:2:1:1) and placed inside a closed plastic cover for six weeks before the cover was opened gradually.
Stevia (Stevia rebaudiana Bertoni) is a natural zero-calorie sweetener plant grown in a high population density.Tissue culture technique is useful for rapid mass propagationof plants to provide superior planting materials. Experimentswere conducted to increase growth and multiplication ofshoots and vigor of plantlets of stevia. Explants used wereapical and axillary buds from plantlets grown on MS mediumwithout plant growth regulators. Combinations of BA andIAA at different concentrations were used for shoot growthand multiplication, whereas plant growth retardants(ancymidol and paclobutrazol) and light intensity were usedfor plantlet vigor. The results showed that stevia explantscultured on MS medium without plant growth regulatorsproduced the highest shoots (4.5 cm) with two shoots perexplant. The best multiplication rate of shoots were found onMS medium added with 1.13 mg/L BA combined with0.35 mg/L IAA which produced on average 4.5 shoots and11.9 nodes per initial explant. Ancymidol and paclobutrazolconcentrations affected significantly growth and vigor ofstevia plantlets. Increasing the concentration of ancymidoland paclobutrazol decreased plantlet height and biomassfresh weight, but increased stem diameter. Paclobutrazol at0.1 mg/L was the best treatment to increase the vigor ofstevia plantlets. Light intensity at 20 µmol/m 2 /s gave betterplantlet vigor than other light intensities. It can be concludedthat multiplication of stevia shoots should be grown on MSmedium supplemented with 1.13 mg/L BA + 0.35 mg/L IAAand the vigor of the shoots can be increased by culturing onMS medium containing 0.1 mg/L paclobutrazol underfluorescence lamps with 20 µmol/m 2 /s light intensity.AbstrakStevia (Stevia rebaudiana Bertoni) adalah tanamanpemanis alami nir-kalori yang ditanam dengan kerapatanpopulasi yang sangat tinggi. Teknik kultur jaringan dapatdigunakan untuk perbanyakan tanaman secara massal dancepat untuk menyediakan bahan tanam unggul. Penelitiantelah dilakukan untuk meningkatkan pertumbuhan danmultiplikasi tunas dan keragaan planlet stevia. Eksplan yangdigunakan adalah tunas pucuk dan tunas samping dari planletyang ditumbuhkan pada medium MS tanpa zat pengaturtumbuh. Kombinasi BA dan IAA dengan konsentrasi yangberbeda digunakan untuk pertumbuhan dan multiplikasitunas, sedangkan zat penghambat tumbuh (ansimidol danpaklobutrazol) serta intensitas cahaya digunakan untukkeragaan planlet. Hasil penelitian menunjukkan bahwaeksplan stevia yang ditumbuhkan pada medium MS tanpa zatpengatur tumbuh menghasilkan tunas paling tinggi (4,5 cm)dengan dua tunas per eksplan. Multiplikasi tunas terbaikdiperoleh pada medium dengan BA 1,13 mg/L yangdikombinasikan dengan IAA 0,35 mg/L yang menghasilkan4,5 tunas dan 11,9 ruas per eksplan awal. Konsentrasiansimidol dan paklobutrazol berpengaruh nyata terhadappertumbuhan dan keragaan planlet stevia. Meningkatnyakonsentrasi ansimidol dan paklobutrazol menurunkan tinggiplanlet dan bobot basah biomassa, tetapi meningkatkandiameter batang. Paklobutrazol pada konsentrasi 0,1 mg/Lmerupakan perlakuan terbaik untuk meningkatkan keragaanplanlet stevia. Intensitas cahaya pada 20 µmol/m 2 /detikmemberikan keragaan planlet yang lebih baik dibandingkanintensitas cahaya yang lain. Dapat disimpulkan bahwamultiplikasi tunas stevia sebaiknya dilakukan pada mediumMS ditambah BA 1,13 mg/L + IAA 0,35 mg/L dan keragaanplanlet dapat ditingkatkan dengan menanam planlet padamedium MS ditambah paklobutrazol 0,1 mg/L di bawahlampu fluoresen dengan intensitas cahaya 20 µmol/m 2 /detik.
Kopyor coconut is a special coconut grown in Indonesia. Nuts AbstrakKelapa kopyor adalah kelapa khusus yang tumbuh di Indonesia. Buah kelapa kopyor tidak dapat digunakan sebagai sumber bahan tanam karena endospermanya rusak, oleh karena itu teknik penyelamatan embrio in vitro digunakan untuk perbanyakan kelapa kopyor. Aklimatisasi merupakan tahap kritis dalam kultur jaringan kelapa kopyor. Penelitian dilakukan untuk menentukan pengaruh kondisi awal planlet sebelum aklimatisasi terhadap daya hidup dan pertumbuhannya dalam kondisi ex vitro. Lima ulangan yang masing-masing terdiri dari 50 planlet kelapa kopyor varietas dalam dengan kondisi tunas dan akar yang berbeda digunakan dalam proses aklimatisasi. Planlet ditanam pada pot plastik berisi campuran tanah, pasir dan pupuk kandang, kemudian diletakkan di dalam sungkup plastik tertutup rapat. Sungkup dibuka secara bertahap setelah 3 bulan dan dipindah ke pembibitan setelah 4,5 bulan. Frekuensi hidup dan pertumbuhan (tinggi tanaman, jumlah daun dan diameter batang) bibit diamati setelah 6 bulan aklimatisasi. Hasil penelitian menunjukkan bahwa tinggi awal planlet dan panjang akar berpengaruh nyata terhadap daya hidup dan pertumbuhan bibit kelapa kopyor selama aklimatisasi. Paramater lain dari kondisi awal planlet seperti jumlah daun, diameter batang, jumlah akar primer, dan keberadaan akar sekunder tidak berpengaruh terhadap daya hidup dan pertumbuhan bibit. Untuk memperoleh daya hidup yang tinggi (84,7%) dan pertumbuhan yang baik pada tahap aklimatisasi maka tinggi planlet kelapa kopyor harus 20 cm atau lebih sebelum diaklimatisasi. Panjang akar planlet lebih dari 5 cm juga menghasilkan daya hidup planlet yang tinggi.[Kata kunci: Cocos nucifera, kelapa kopyor, kultur embrio, keragaan planlet, aklimatisasi] PendahuluanKelapa (Cocos nucifera L.) kopyor adalah varian tanaman kelapa yang menghasilkan buah kelapa abnormal yaitu daging buah (endosperma) lepas dari batoknya dan bertekstur remah yang mempunyai rasa berbeda dibandingkan dengan kelapa biasa. Buah kelapa bersifat kopyor karena tidak mempunyai enzim pembentuk daging buah yakni α-D-galaktosidase (Mujer et al., 1984). Sifat kopyor ini diturunkan secara genetik. Di alam, buah kelapa kopyor diperoleh dari tanaman kelapa yang mempunyai karakter genetik kopyor namun persentase buah kopyornya hanya sekitar 2-10% per tandan (Maskromo & Novarianto, 2007) karena gen kopyor merupakan *) Penulis
scite is a Brooklyn-based organization that helps researchers better discover and understand research articles through Smart Citations–citations that display the context of the citation and describe whether the article provides supporting or contrasting evidence. scite is used by students and researchers from around the world and is funded in part by the National Science Foundation and the National Institute on Drug Abuse of the National Institutes of Health.
hi@scite.ai
10624 S. Eastern Ave., Ste. A-614
Henderson, NV 89052, USA
Copyright © 2024 scite LLC. All rights reserved.
Made with 💙 for researchers
Part of the Research Solutions Family.