Grazing represents the most extensive use of land worldwide. Yet its impacts on ecosystem services remain uncertain because pervasive interactions between grazing pressure, climate, soil properties, and biodiversity may occur but have never been addressed simultaneously. Using a standardized survey at 98 sites across six continents, we show that interactions between grazing pressure, climate, soil, and biodiversity are critical to explain the delivery of fundamental ecosystem services across drylands worldwide. Increasing grazing pressure reduced ecosystem service delivery in warmer and species-poor drylands, whereas positive effects of grazing were observed in colder and species-rich areas. Considering interactions between grazing and local abiotic and biotic factors is key for understanding the fate of dryland ecosystems under climate change and increasing human pressure.

Potato cyst nematodes induce changes in plant host gene expression following root invasion. For accurate comparison of gene expression by reverse transcription quantitative real-time PCR (RT-qPCR), internal reference genes are necessary for transcript normalization. Very few experimental data on suitable reference genes are available for interactions between plant and root pathogens. In this study, we tested eight potential candidate reference genes, for normalizing levels of potato gene transcripts by RT-qPCR, after inoculation by nematodes. Ranking of candidate reference genes was performed using RefFinder WEB-based software. Four reference genes, RPN7 (26S proteasome regulatory subunit), UBP22 (Ubiquitin-specific protease 22), OXA1 (OXA1 protein) and MST2 (mercaptopyruvate sulfurtransferase), were stably expressed in roots of susceptible or resistant potato plants, infected or uninfected by Globodera pallida. A normalization factor based on data from these four genes, highly homologous between potato and tomato, was used to normalize the expression of a chitinase gene, which was induced by nematodes in roots of potatoes carrying the resistance allele at a low effect QTL, GpaXI spl .

Pepper is known to be a recalcitrant species to genetic transformation via Agrobacterium tumefaciens. A. rhizogenes-mediated transformation offers an alternative and rapid possibility to study gene functions in roots. In our study, we developed a new and efficient system for A. rhizogenes transformation of the cultivated species Capsicum annuum. Hypocotyls and foliar organs (true leaves and cotyledons) of Yolo Wonder (YW) and Criollo de Morelos 334 (CM334) pepper cultivars were inoculated with the two constructs pBIN-gus and pHKN29-gfp of A. rhizogenes strain A4RS. Foliar explants of both pepper genotypes infected by A4RS-pBIN-gus or A4RS-pHKN29-gfp produced transformed roots. Optimal results were obtained using the combination of the foliar explants with A4RS-pHKN29-gfp. 20.5% of YW foliar explants and 14.6% of CM334 foliar explants inoculated with A4RS-pHKN29-gfp produced at least one root expressing uniform green fluorescent protein. We confirmed by polymerase chain reaction the presence of the rolB and gfp genes in the co-transformed roots ensuring that they integrated both the T-DNA from the Ri plasmid and the reporter gene. We also demonstrated that co-transformed roots of YW and CM334 displayed the same resistance response to Phytophthora capsici than the corresponding untransformed roots. Our novel procedure to produce C. annuum hairy roots will thus support the functional analysis of potential resistance genes involved in pepper P. capsici interaction.

El nematodo del nudo de la raíz Meloidogyne incognita es una de las especies más peligrosas y comunes que afectan a las solanáceas, entre ellas la naranjilla Solanum quitoense. El objetivo de este trabajo fue evaluar el potencial reproductivo de un aislamiento de M. incognita en tres especies de Solanaceas en invernadero: Solanum sessiliflorum, Solanum hirtum (reportada anteriormente como resistente) y S. quitoense (susceptible). Plantas de las tres especies fueron sembradas en maceta y a las cuatro semanas fueron inoculadas con 2500 huevos más juveniles en estado 2 (J2). El inóculo inicial se obtuvo de raíces infestadas de plantas de S. quitoense recolectadas en huertos comerciales de naranjilla. Se utilizó un diseño experimental completamente aleatorizado. Las variables evaluadas a los 80 días después de la inoculación fueron: índice de agallas (GI), factor de reproducción de nematodos (RF), peso seco del área foliar, altura de la planta y diámetro del tallo. Se encontró que las tres especies mostraron agallamiento, pero S. sessiliflorum y S. hirtum mostraron el menor número de nudos de raíz con valores de 33,73 y 34,73. Además, S. sessiliflorum y S. hirtum presentaron una categoría de resistente/hipersensitivo con factores de reproducción de 0,94 y 0,85 (RF > 1) respectivamente, mientras que S. quitoense fue susceptible con un valor de 1,56. En términos de rendimiento de follaje (peso seco), altura de la planta y diámetro del tallo se observó una respuesta de tolerancia en S. sessiliflorum y S. hirtum en relación a S. quitoense.

RESUMENSpodoptera frugiperda es un insecto considerado como una plaga primaria de cultivos de maíz. Esta especie polífaga, incluida en el grupo de los comúnmente conocidos como gusanos cogolleros, es considerada una plaga, de efectos económicos de importancia, en varios países del continente americano. En el maíz, estas larvas causan daños desde el estado de plántula hasta la etapa de pre-madurez. Sin embargo, la identificación de los lepidópteros normalmente se realiza en base a la morfología de los adultos y, por lo tanto, las larvas tienen que criarse hasta el estado adulto para su identificación. Actualmente, el uso de herramientas moleculares como la PCR, basada en secuencias de ADN mitocondrial o nuclear, son utilizadas para identificación inequívoca de plagas o biotipos a partir de larvas. El objetivo de esta investigación fue identificar, a nivel molecular por análisis de PCR, la presencia de la especie S. frugiperda en cultivos de maíz blanco en el Sur del Ecuador. Para el efecto se colectaron un total de 360 larvas en 36 sitios distribuidos en tres provincias: 18 en Azuay, 12 en Cañar y 6 en Loja, entre los meses de enero a marzo de 2015. La identificación molecular se realizó con primers específicos para S. frugiperda a nivel del gen mitocondrial de la subunidad 1 citocromo oxidasa (COI) I. Como resultado se generaron amplificaciones de pesos moleculares de aproximadamente 500 pb correspondientes a S. frugiperda. Esta caracterización molecular es, a nuestro conocimiento, la primera que se realiza para el Austro del Ecuador. Palabras clave: Maíz blanco, citocromo oxidasa, caracterización molecular.