Many chiral pesticides are introduced into the environment as racemates, although their pesticidal activity is usually the result of preferential reactivity of only one enantiomer, while the other enantiomer may have toxic effects against nontarget organisms. Methamidophos (O,S-dimethyl phosphoramidothioate), a chiral compound, is an insecticide widely used in agriculture in both developed and developing countries. However, this pesticide has a high toxicity not only to targeted insects but also to human and animals. In the present study, the enantiomers of methamidophos were enantiomerically separated by a semipreparative chiral liquid chromatography at the multimilligram scale on a polysaccharide-based chiral stationary phase and a preliminary evaluation of their in vitro inhibition of plasma butyrylcholinesterase (BChE) of hens was performed. In the present study, our first effort was to resolve the racemic mixture of methamidophos and to that end reversed-phase, normal-phase, and polar organic elution conditions were investigated in four different polysaccharide-based chiral phases. The best performance was achieved on a cellulose tris(3,5-dimethylphenylcarbamate) phase under normal phase. This chromatographic condition allowed the separation of 225 mg of methamidophos enantiomers with a high degree of chiral purity (>98%) in a short analysis time. Significant differences were found between the concentration that causes 50% of enzyme inhibition (IC50) of the three isoforms of methamidophos. (-)-Methamidophos showed an IC50 approximately three times larger than the (+)-enantiomer for plasma BChE of hens.
RESUMO O gene da proteína de nucleocapsídeo (1.230 pb) da estirpe M41 do vírus da bronquite infecciosa (VBI) foi amplificado pelas reações de transcrição reversa e em cadeia da polimerase (RT-PCR) e clonado, em seguida, em dois sistemas; pET28a - Escherichia coli e pFLD -Pichia pastoris. Os produtos recombinantes construídos para expressão (pET28a-N ou pFLD-N) foram identificados por análises de PCR e de sequenciamento de nucleotídeos. Os clones transformantes da linhagem BL21 de E. coli e da linhagem GS115 de P. pastoris foram submetidos aos protocolos apropriados de indução. A expressão da proteína N de fusão com etiqueta de poli-histidina e com massa molecular de 54 kDa foi determinada pelas técnicas de SDS-PAGE e de Western blotting, confirmando-se que ambas proteínas N recombinantes apresentaram tamanhos e antigenicidade compatíveis com a proteína N nativa do próprio VBI. O sistema E. coli expressou uma quantidade relevante da proteína N recombinante, enquanto que o sistema P. pastoris produziu uma baixa recuperação dessa proteína recombinante. A proteína N recombinante gerada pelo sistema bacteriano foi purificada em resina de níquel-sepharose. O conjunto de resultados indica que o sistema de expressão constituído por pET28a – E. coli é mais efetivo para produzir a proteína N recombinante do VBI destinada ao uso como antígeno para detectar anticorpos anti-virais específicos em ensaios de imunodiagnóstico para essa infecção viral.
RESUMO Variações genética e antigênica são observadas com frequência elevada entre estirpes do VBIG e envolvem principalmente a glicoproteína S1. Com o objetivo de contribuir com a disponibilidade de ferramentas para o imunodiagnóstico e a imunoprofilaxia da bronquite infecciosa das galinhas foi desenvolvida uma metodologia para expressão recombinante da glicoproteína S1 na levedura Picchia pastoris. O cDNA do gene codificador dessa proteína foi obtido a partir de RNA viral de ovos embrionados infectados com a estirpe M41 do VBIG submetido à transcrição reversa (RT) e reação em cadeia da polimerase (PCR), amplificando-se a sequência codificadora de S1 acrescida de extremidades compatíveis com a clonagem no vetor usado na transformação de leveduras. A indução com metanol resultou na produção de uma proteína detectada como banda única do tamanho previsto, em western-blot, no lisado celular das leveduras transformadas. A expressão em P. pastoris mostrou ser um método eficaz para a produção recombinante da proteína S1 do VBIG, com potencial para utilização em técnicas de imunodiagnóstico da bronquite infecciosa das galinhas.
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