Abstract:The aims of this study were to clarify the reproductive biology of the Ustilago filiformis Schrank, as causal agent of the stripe smut of Glyceria multiflora, determine the infection process of the pathogen and analyze the histological changes associated hostGlyceria any fungus attack. Moreover, the life cycle of the fungus was elucidated for the first time. Both teliospores and basidiospores were found to be equally efficient in producing the infection in Glyceria plants after the plants had been inoculated. These results constitute an important contribution for the understanding of the epidemiology of the disease.
Th e eff ect of loose kernel smut fungus Sporisorium cruentum on Sorghum halepense (Johnson grass) was investigated in vitro and in greenhouse experiments. Smut infection induced a decrease in the dry matter of rhizomes and aerial vegetative parts of the plants evaluated. Moreover, the diseased plants showed a lower height than controls. Th e infection resulted in multiple smutted buds that caused small panicles infected with the fungus. In addition, changes were observed in the structural morphology of the host. Leaf tissue sections showed hyphae degrading chloroplasts and vascular bundles colonized by the fungus. Subsequently, cells collapsed and widespread necrosis was observed as a symptom of the disease. Th e pathogen did not colonize the gynoecium of Sorghum plants until the tassel was fully developed. Th e sporulation process of the fungus led to a total disintegration of anthers and tissues. When panicles were inspected before emergence, fungal hyphae were observed on fl oral primord. Histological sections of panicles showed fungal hyphae located in the parenchyma tissue and the nodal area. Infection occurred in the fl oral primordium before the tassel had fully developed and emerged from the fl ag leaf. Grains were replaced by sori surrounded by a thin membrane that usually was broken before or aft er the emergence of the panicle. Th e results, together with the signifi cant decrease of the dry matter of rhizomes and seeds of S. halepense, suggest that S. cruentum could be considered as a potential biocontrol agent in the integrated management of this weed.
En las últimas décadas, la mayor concientización de la sociedad sobre los efectos nocivos de los agroquímicos sobre la salud y el medio ambiente, ha generado cambios en algunas explotaciones hortícolas y florícolas del cinturón verde de Buenos Aires, que han incorporado otras estrategias de control de plagas, amigables con el medio ambiente, reduciendo el uso de plaguicidas sintéticos. En este contexto, la biofumigación con mostaza india (Brassica juncea L. Czerniak) se presenta como una táctica biológica eficaz para el control de plagas de suelo, que podría formar parte de un programa de manejo agroecológico de plagas. En nuestro país hay registros de prácticas de biofumigación con recursos locales (principalmente, restos de cosecha de especies hortícolas brassicáceas), pero no existían desarrollos de cultivares con propósitos biofumigantes. Por este motivo, se realizó un proceso de selección masal y se obtuvo la variedad biofumigante SANTA CATALINA UNLP, que es el primer cultivar de mostaza india inscripto en el Registro Nacional de Cultivares del INASE. La variedad de mostaza india SANTA CATALINA UNLP fue desarrollada para su utilización como biofumigante de suelos y sustratos en producciones hortícolas y florícolas. Dado que el proceso de selección se realizó en la localidad de Llavallol, conurbano bonaerense, este cultivar se adapta a las condiciones medioambientales del cinturón verde de Buenos Aires. Numerosas investigaciones realizadas durante el período de selección del cultivar, han demostrado que la biofumigación con esta variedad es eficaz para suprimir algunas especies de hongos fitopatógenos, reducir poblaciones de nematodos fitófagos y para inhibir la emergencia y el crecimiento de algunas malezas. También se demostró que la biofumigación con mostaza india no afecta al hongo antagonista Trichoderma spp. ni a los nematodos de vida libre del suelo (benéficos). La variedad SANTA CATALINA UNLP fue desarrollada en el Instituto Fitotécnico de Santa Catalina, dependencia de la Facultad de Ciencias Agrarias y Forestales de la Universidad Nacional de La Plata. Desde el año 2009 hasta el 2016 se realizó selección masal sobre una población mixta proveniente de un lote de semillas de mostaza india que ingresó al país procedente de la India, para ser comercializado como condimento. Se seleccionaron las plantas con mayor biomasa aérea y con menor incidencia y severidad de podredumbre negra o mancha en V (Xanthomonas campestris pv. campestris). Paralelamente se realizaron ensayos para evaluar su capacidad como biofumigante para el biocontrol de plagas agrícolas. En junio de 2017 fue multiplicada, verificándose la estabilidad de la variedad. En varios ensayos se observó que la biofumigación con mostaza india tuvo efecto supresor sobre el crecimiento de Fusarium graminearum cultivado in vitro. En otro trabajo se concluyó que la biofumigación redujo significativamente la cantidad de esclerocios de Sclerotium rolfsii. Los resultados obtenidos en varios ensayos mostraron que la técnica de biocontrol con el hongo antagonista Trichoderma spp. puede ser considerada compatible con la biofumigación con B. juncea. Además, el crecimiento del hongo benéfico Trichoderma spp. no fue afectado por la biofumigación con B. juncea. En otro ensayo se observó que la biofumigación con dosis bajas B. juncea no inhibió el crecimiento in vitro de colonias de Azospirillum brasilense, bacteria rizosférica promotora del crecimiento vegetal. Con respecto al efecto de la biofumigación sobre las malezas, se observó reducción del crecimiento de varias especies de malezas: Anoda cristata (malva cimarrona), Picris echiodes, Portulaca oleracea (verdolaga), Digitaria sanguinalis (pasto de cuaresma) y Taraxacum officinalis (diente de león). También se determinó que la biofumigación con SANTA CATALINA UNLP incrementó la densidad de nematodos de vida libre y redujo la densidad de nematodos parásitos de plantas.
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