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La Cachama negra (Colossoma macropomum) es un pez nativo de Sur América. En Colombia, no hay estudios publicados sobre protocolos estandarizados para su crioconservación seminal. La implementación de esta biotecnología permitiría su producción comercial continua e introducción en bancos de recursos genéticos. El objetivo del presente estudio fue evaluar los efectos de la crioconservación sobre el semen de C. macropomum sometido a diferentes crioprotectores y sistemas de empaque con miras a consolidar un protocolo eficiente para la especie. Se utilizó semen de tres machos sexualmente maduros (4.6 ± 1.6 kg). El semen fue diluido en una proporción 1:4 usando tres diferentes agentes crioprotectores (Dimetilsulfoxido 10% [DMSO], Metanol 10% [MET], Etilenglicol 5% [ETG]) con o sin la inclusión de yema de huevo 12% (YH) y glucosa 5.5%. Además, fueron evaluados dos sistemas de empaque (pajillas de 0.5 ml y macrotubos de 2.0 ml), las cuales fueron expuestas a vapores de nitrógeno líquido (NL) y luego almacenadas durante 8 meses. El semen fue descongelado en baño de agua a 37°C por 60 s y se determinó la motilidad masal (%) [MM], duración de la motilidad (s) [DM], integridad de membrana plasmática (%) [IMP] y fertilidad (%). La motilidad postdescongelación en todos los tratamientos fue significativamente diferente (P<0,05) al control siendo MET 2.0 ml el mejor (53 ± 5.8%). Respecto al control la DM tuvo un comportamiento similar para todos los tratamientos siendo solo diferente significativamente para ETG+YH 0.5 ml. La IMP se mantuvo sin diferencias significativas en MET 2.0 ml con respecto al control. La fertilidad fue significativamente menor en la mayoría de tratamientos con YH, siendo MET 2.0 ml el mejor (94.7 ± 0.6%). En conclusión, el semen de Colossoma macropomum es susceptible de crioconservación no siendo necesaria la utilización de YH en los diluyentes.

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In the present study, we examined three permeating cryoprotectant agents (CPAs) and two freezing systems for the cryopreservation of coporo spermatozoa. Milt samples of 5 males were diluted with cryoprotectant solutions containing 10% Me 2 SO, 10% MeOH and 8% DMA, respectively, with or without hen egg yolk. Half of the 0.25-ml straws were frozen in a programmable system and the other half in a dry shipper.Sperm motility and viability were evaluated in both fresh and post-thaw samples by conventional methods. Sperm motility and viability were both significantly lower in all post-thaw treatments. Of the CPA tested, 10% MeOH provided the best protection as there were no significant differences in motility (66.67 ± 5.77% vs. 66.68 ± 5.70%) and viability (80.00 ± 4.35% vs. 83.33 ± 0.57) between the programmable system and the dry shipper when that CPA was used. On the other hand, the most effective freezing system was the programmable freezer as all the CPA tested presented sperm motility (43.33 ± 5.77 to 66.50 ± 5.00%). In conclusion, coporo sperm can be cryopreserved in either of these two systems using 10% methanol.