Viremia, virus shedding, and antibody response during natural avian polyomavirus infection in parrots

Phalen, David N.; Radabaugh, C. S.; Dahlhausen, R. D.; Styles, Darrel K.

doi:10.2460/javma.2000.217.32

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“…Most APV infections in fledgling and adult budgerigars result in subclinical forms and only a small percentage of infected birds develop a clinically apparent disease (Phalen et al, 1997(Phalen et al, , 2000. In enzootically infected flocks of budgerigars, the infection of nestlings breaks out within the first few days after hatching and prevalence can reach up to 100% (Phalen et al, 1993(Phalen et al, , 1997.…”

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“…The disease occurs especially in hand-raised nestlings between 3 to 14 weeks of age. Most infections in parent-raised nestlings and adults are asymptomatic (Phalen et al, 1997(Phalen et al, , 2000. In cockatiels (Nymphicus hollandicus), resistance to the clinically apparent disease is assumed (Phalen et al, 1997).…”

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“…Infected budgerigars that survive exhibit feather problems and shed the virus in their faeces and skin and feather dander for up to 6 months after infection. After that, the concentration of the virus in their tissues gradually decreases and virus shedding can completely diminish with the onset of sexual maturity and first breeding (Phalen et al, 1993(Phalen et al, , 1997(Phalen et al, , 2000.…”

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“…The course of the disease depends on the species and host's age and other, still largely unknown factors (Phalen et al, 2000). Most APV infections in fledgling and adult budgerigars result in subclinical forms and only a small percentage of infected birds develop a clinically apparent disease (Phalen et al, 1997(Phalen et al, , 2000.…”

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Unusual fatal avian polyomavirus infection in nestling cockatiels (Nymphicus hollandicus) detected by nested polymerase chain reaction

Tomášek¹,

Kubicek²,

Tukač³

2007

Vet. Med. - Czech

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High mortality of nestling cockatiels (Nymphicus hollandicus) was observed in one breeding flock in Slovakia. The nestling mortality affected 50% of all breeding pairs. In general, all the nestlings in affected nests died. Death occurred suddenly in 4-to 6-day-old birds, most of which had full crops. No feather disorders were diagnosed in this flock. Two dead nestlings were tested by nested PCR for the presence of avian polyomavirus (APV) and Chlamydophila psittaci and by single-round PCR for the presence of beak and feather disease virus (BFDV). After the breeding season ended, a breeding pair of cockatiels together with their young one and a fledgling budgerigar (Melopsittacus undulatus) were examined. No clinical alterations were observed in these birds. Haemorrhages in the proventriculus and irregular foci of yellow liver discoloration were found during necropsy in the young cockatiel and the fledgling budgerigar. Microscopy revealed liver necroses and acute haemolysis in the young cockatiel and confluent liver necroses and heart and kidney haemorrhages in the budgerigar. Two dead cockatiel nestlings, the young cockatiel and the fledgling budgerigar were tested positive for APV, while the cockatiel adults were negative. The presence of BFDV or Chlamydophila psittaci DNA was detected in none of the birds. The specificity of PCR was confirmed by the sequencing of PCR products amplified from the samples from the young cockatiel and the fledgling budgerigar. The sequences showed 99.6-100% homology with the previously reported sequences. To our knowledge, this is the first report of APV infection which caused a fatal disease in parent-raised cockatiel nestlings and merely subclinical infection in budgerigar nestlings.

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Unusual fatal avian polyomavirus infection in nestling cockatiels (Nymphicus hollandicus) detected by nested polymerase chain reaction

Tomášek¹,

Kubicek²,

Tukač³

2007

Vet. Med. - Czech

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“…A doença é caracterizada por uma hemorragia generalizada, podendo ser observado hematomas subcutâneos (PHALEN et al, 2000), ascite, edema e distrofia em (PHALEN, 2005). A maior evidencia da doença em um plantel, entretanto, é a maior mortalidade…”

Section: Introdução 1 Introdução Geralunclassified

<b>Caracterização molecular de bornavírus, poliomavírus e circovírus em aves de cativeiro, vida livre e criação comercial</b>

Azevedo¹

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AGRADECIMENTOSInicio os agradecimentos com a minha família: a meus pais: Maria de Jesus Garcia Philadelpho Azevedo e Philadelpho Azevedo Neto; ao meu irmão, Felipe Philadelpho Azevedo e a minha cunhada, Carla Linhares. Por estarem sempre presente e incentivando, por cederem os ouvidos todas as vezes que precisei desabafar, por acreditarem em mim mesmo quando eu mesmo não acreditava. Amo vocês.Ao meu namorado, Sahelê Montoza de Oliveira Felício, companheiro de todas as horas, por todo o carinho e compreensão.Não poderia deixar de agradecer também a minha segunda família, Luís Faria, Olga Penalva, Guilherme Penalva, Renata Penalva e Maria do Carmo. Por me fazerem sentir em casa em São Paulo, pela acolhida, pelo apoio e amor incondicional.Ao meu orientador, Prof. Dr. Antonio José Piantino Ferreira, por me orientar e me apoiar e pela sua disponibilidade e a Prof. Dr. Claudete S. A. Ferreira, que juntos formam uma outra família que me acolheu com muito carinho.Ao Dennis Rubbenstroth, pela disponibilidade e por oferecer seu conhecimento, ajudando na análise dos dados durante este trabalho. Sua parceria foi muito importante.A FMVZ USP e ao VPT por me darem essa oportunidade de enriquecer meu conhecimento.A Marta Brito Guimarães, que além de ceder parte do material utilizado neste projeto, sempre foi uma mentora e grande amiga.A Yamê Miniero Davies e Luciana Allegretti Frazão pela ajuda no laboratório, por animar todo lugar que passam e pela amizade, que levarei para a vida toda.Aos meus amigos Marcos P. V. Cunha, Gabriela Oliveira, Mirela Vilela, Dennis Zanatto, Claudia Carranza, Luis Nunes e Silvana Santander pelo companheirismo.A University of Saskatchewan pela oportunidade de intercâmbio.A meus amigos que fiz no Canadá, que tornaram esta experiência ainda mais especial: Tatiana Natasha, Alexandra Belota, Eduardo Bacchi, Amanda Nascimento, Carolina Malgarin, Tábata Bagatim, Craig Baird, Carolina topan, Shelly Popowich, Ashish Gupta.Aos membros da Banca Examinadora, por terem atendido ao convite e dispor de tempo e conhecimento para analisar este trabalho.A Milena Francisco de Oliveira, sempre com bom humor ajudando com as burocracias da pós-graduação. Muito obrigada, você é parte essencial da vida de todos nós.A CAPES pelo apoio financeiro.A todos que participaram direta ou indiretamente neste projeto."A mente que se abre a uma nova ideia jamais voltará ao seu tamanho original" Albert Eistein As doenças virais são de extrema importância para a saúde das aves. Os vírus podem se espalhar através de fezes, secreções respiratórias ou exfoliação epitelial de penas e pele, dificultando ainda mais esse controle. A utilização do PCR permite detecção de pequenas concentrações do vírus além da possibilidade de diagnosticar a patologia antes de iniciar alterações histológicas. O bornavírus aviário é responsável pela doença da dilatação pró-ventricular (PDD) em psitacídeos e outras aves, uma doença neurológica letal, que foi descoberta no início da década de oitenta na Europa e América do Norte. A detecção do vírus em passerifor...

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Papillomaviruses and Polyomaviruses

Phalen¹

2007

Infectious Diseases of Wild Birds

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Viremia, virus shedding, and antibody response during natural avian polyomavirus infection in parrots

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Unusual fatal avian polyomavirus infection in nestling cockatiels (Nymphicus hollandicus) detected by nested polymerase chain reaction

Unusual fatal avian polyomavirus infection in nestling cockatiels (Nymphicus hollandicus) detected by nested polymerase chain reaction

<b>Caracterização molecular de bornavírus, poliomavírus e circovírus em aves de cativeiro, vida livre e criação comercial</b>

Papillomaviruses and Polyomaviruses

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