Identification of G protein coupled receptors for opsines and neurohormones in Rhodnius prolixus. Genomic and transcriptomic analysis

Ons, Sheila; Lavore, Andrés; Sterkel, Marcos; Wulff, Juan Pedro; Sierra, Ivana; Martínez-Barnetche, Jesús; Rodrı́guez, Mario H.; Rivera‐Pomar, Rolando

doi:10.1016/j.ibmb.2015.05.003

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“…Number CG4395). The resulting phylogenetic tree suggested that a third CT/DH like-receptor previously described by Ons, et al 29 seems to be exclusive of heteropteran insects ( Supplementary Fig. S1).…”

Section: Manual Gene Curationmentioning

confidence: 71%

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Transcriptomics supports local sensory regulation in the antenna of the kissing bugRhodnius prolixus

Latorre-Estivalis

Sterkel

Ons

et al. 2019

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11Rhodnius prolixus has become a model for revealing the molecular bases of insect sensory biology due to 12 the publication of its genome, its well characterized behavioural repertoire and the advent of NGS 13 technologies. Gene expression modulation underlies behaviour-triggering processes at peripheral and 14 central levels. Still, the regulation of sensory-related gene transcription in sensory organs is poorly 15 understood. Here we study the genetic bases of plasticity in antennal sensory function, using R. prolixus as 16 an insect model. Antennal expression of neuromodulatory genes such as those coding for neuropeptides, 17 neurohormones and their receptors was characterized by means of RNA-Seq. New nuclear receptor and 18 takeout gene sequences were identified for this species, as well as those of enzymes involved in the 19 biosynthesis and processing of neuropeptides and biogenic amines. We report a broad repertoire of 20 neuromodulatory and endocrine genes expressed in antennae and suggest that they modulate sensory 21 neuron function locally. Diverse neuropeptide-coding genes showed consistent expression in the antennae 22 of all stages studied. Future studies should characterize the contribution of these modulatory components 23 acting over antennal sensory processes to assess the relative contribution of peripheral and central 24 regulatory systems on the plastic expression of insect behaviour.25

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Section: Manual Gene Curationmentioning

confidence: 71%

“…N° AND99324). A second kinin receptor (previously described as an orphan receptor by Ons, et al 29 ) and a Tachykinin 86C-like receptor were identified. Most of the Family B neuropeptide receptor gene models were also fixed ( Supplementary Table S2).…”

Section: Manual Gene Curationmentioning

confidence: 95%

Transcriptomics supports local sensory regulation in the antenna of the kissing bugRhodnius prolixus

Latorre-Estivalis

Sterkel

Ons

et al. 2019

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“…Inicialmente se identificaron y caracterizaron los genes precursores de neuropéptidos con aproximaciones genómicas, transcriptómicas y proteómicas (Ons, Richter et al 2009;Ons, Sterkel et al 2011;Sterkel, Urlaub et al 2011;Sterkel, Oliveira et al 2012;Ons, Lavore et al 2016;Traverso, Sierra et al 2016;Ons 2017). Mediante uso de peptidómica cuantitativa y transcriptómica se evaluó la respuesta de cada neuropéptido inmediatamente después de una ingesta de sangre (Sterkel, Urlaub et al 2011;Ons, Lavore et al 2016), y se determinó el patrón de expresión de un elevado número de neuropéptidos mediante uso de inmunohistoquímica (IHQ) (Ons, Sterkel et al 2011;Wulff, Sierra et al 2017). Además, se identificaron y clasificaron los GPCRs de neuropéptidos, aminas biogénicas y opsinas en el genoma de R. prolixus y en transcriptomas de otros triatominos (Ons, Lavore et al 2016).…”

Section: Rhodnius Prolixus Como Insecto Modelo Y Vector De Enfermedadunclassified

“…Mediante uso de peptidómica cuantitativa y transcriptómica se evaluó la respuesta de cada neuropéptido inmediatamente después de una ingesta de sangre (Sterkel, Urlaub et al 2011;Ons, Lavore et al 2016), y se determinó el patrón de expresión de un elevado número de neuropéptidos mediante uso de inmunohistoquímica (IHQ) (Ons, Sterkel et al 2011;Wulff, Sierra et al 2017). Además, se identificaron y clasificaron los GPCRs de neuropéptidos, aminas biogénicas y opsinas en el genoma de R. prolixus y en transcriptomas de otros triatominos (Ons, Lavore et al 2016). Más recientemente hemos caracterizado los genes precursores de neuropéptidos en transcriptomas de T. infestans, Triatoma pallidipennis y T. dimidiata, y hemos comprobado un alto grado de conservación de estos genes entre insectos triatominos (Traverso, Sierra et al 2016).…”

Section: Rhodnius Prolixus Como Insecto Modelo Y Vector De Enfermedadunclassified

“…Existen aproximadamente 50 tipos de genes codificantes para GPCRs de neuropéptidos en insectos. Se han identificado por ejemplo, 37 de estos genes en el genoma de Apis mellifera, 48 en Drosophila melanogaster (Altstein and Nassel 2010) y Tribolium castaneum (Hauser, Cazzamali et al 2008) y 51 en R. prolixus (Ons, Lavore et al 2016). Un mismo neuropéptido puede activar más de un receptor.…”

Section: Introducción General 1 Neuropéptidos En Insectosunclassified

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Genómica, proteómica y fisiología de neuropéptidos en el insecto triatomino Rhodnius prolixus

Wulff¹

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En Argentina existen aproximadamente 2.300.000 infectados de Chagas. El control del insecto vector continúa siendo la opción más viable como control y prevención de la enfermedad. En las últimas dos décadas se detectó la existencia de poblaciones de triatominos resistentes a insecticidas (Triatoma infestans), en las provincias de Chaco, Salta, y en el Sur de Bolivia. Esto representa un grave riesgo para el control de la enfermedad de Chagas en Argentina y la región. El presente trabajo utiliza como organismo modelo al triatomino R. prolixus. Este insecto reúne una serie de características favorables para su uso como modelo en fisiología de insectos: es el segundo vector más importante de la enfermedad de Chagas; posee características favorables para su cría; se conoce su secuencia genómica; los resultados obtenidos en R. prolixus potencialmente pueden aplicarse a otros triatominos, en incluso otros insectos. Particularmente, para estudios de desarrollo post-embrionario como los realizados en este trabajo, una ventaja del modelo es que el ciclo de muda se desencadena de manera predecible tras la ingesta de sangre, lo que permite sincronizar los experimentos. Este trabajo de Tesis se inscribe en el marco de alcanzar alternativas de control de insectos perjudiciales, que resulten más eficientes, selectivas y seguras para el medio ambiente respecto a los insecticidas neurotóxicos en uso. En éste sentido, se estudian los neuropéptidos, hormonas peptídicas que regulan todos los procesos vitales en organismos multicelulares. El estudio de estas moléculas tiene potencial aplicabilidad para el diseño de insecticidas. Podría permitir el diseño de pseudo-péptidos o péptido-miméticos capaces de interferir con la fisiología de insectos de importancia sanitaria o económica, constituyendo una vía novedosa hacia la obtención de nuevos insecticidas.

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Identification of neuropeptides and their G protein‐coupled receptors in the predatory stink bug, Arma custos (Hemiptera: Pentatomidae)

Huang,

Dong,

Yang

et al. 2024

Arch Insect Biochem Physiol

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The predatory stink bug Arma custos has been selected as an effective biological control agent and has been successfully massly bred and released into fields for the control of a diverse insect pests. As a zoophytophagous generalist, A. custos relies on a complex neuropeptide signaling system to prey on distinct food and adapt to different environments. However, information about neuropeptide signaling genes in A. custos has not been reported to date. In the present study, a total of 57 neuropeptide precursor transcripts and 41 potential neuropeptide G protein‐coupled receptor (GPCR) transcripts were found mainly using our sequenced transcriptome data. Furthermore, a number of neuropeptides and their GPCR receptors that were enriched in guts and salivary glands of A. custos were identified, which might play critical roles in feeding and digestion. Our study provides basic information for an in‐depth understanding of biological and ecological characteristics of the predatory bug and would aid in the development of better pest management strategies based on the effective utilization and protection of beneficial natural enemies.

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Identification of G protein coupled receptors for opsines and neurohormones in Rhodnius prolixus. Genomic and transcriptomic analysis

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Transcriptomics supports local sensory regulation in the antenna of the kissing bugRhodnius prolixus

Transcriptomics supports local sensory regulation in the antenna of the kissing bugRhodnius prolixus

Genómica, proteómica y fisiología de neuropéptidos en el insecto triatomino Rhodnius prolixus

Identification of neuropeptides and their G protein‐coupled receptors in the predatory stink bug, Arma custos (Hemiptera: Pentatomidae)

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