Exprerimental infection of laboratory rats with metacercaria of trematodes Paracoenogonimus ovatus (Trematoda, Cyathocotylidae)

Goncharov, S. L.; Soroka, N. M.

doi:10.15407/animbiol18.01.017

Cited by 2 publications

(1 citation statement)

References 1 publication

Supporting

Mentioning

Contrasting

Unclassified

Order By: Relevance

“…В переважній кількості випадків дефінітивним хазяїном збудника параценогонімоза є рибоїдні птахи. За деякими повідомленнями, людина також може заражатися P. ovatus, під час виживання недостатньо знезараженої риби, або якщо порушена технологія приготування страв з риби [4].…”

unclassified

Діагностика Опісторхозу Риб Родини Cyprinida: Сучасний Стан Проблеми

Панікар¹,

Запека²,

Скрипка³

2021

Débats Scientifiques Et Orientations Prospectives Du Développement Scientifique Volume3

View full text Add to dashboard Cite

Панікар І. І. д-р. вет. наук, завідувач кафедри, епізоотології, паразитології та мікробіології ім. проф. В. Я. Атамася, професор Одеський державний аграрний університет Запека І. Є. канд. вет. наук, асистент кафедри нормальної і патологічної морфології та судової ветеринарії Одеський державний аграрний університет ORCID ID: 0000-0002-9815-0562 Скрипка М. В. д-р. вет. наук, професор кафедри нормальної і патологічної морфології та судової ветеринарії Одеський державний аграрний університет УКРАЇНА Анотація. Коропові риби, виловлені у Кременчуцькому водосховищі, є потенційним джерелом інвазії збудниками опісторхозу. Паразитологічним дослідженням плоскирки виявлені збудники P. truncatum (ЕІ-100 %, а ІІ-27±4,86 екз., відповідно). Результати дослідження підтвердженні біопробою. Постановка проблеми. Вивчення збудників родини Opisthorchidae, як біологічного об'єкта, їх еволюційних пристосувань, циклу паразитування, ступеня ураження проміжних і дефінітивних господарів в Україні ведеться протягом багатьох років. Ґрунтовним дослідженням щодо опісторхозу у ветеринарному аспекті присвячені роботи Євтушенко А. В. (2009-2019 рр.) [8], у гуманній медицині-Чемич М. Д. із співавторами (2011-2017 рр.) [18], дослідження інших авторів носять спорадичний характер (Тороченко О. М., 2013 [16]; Гущук І. В. із співавт. [5], Дубинська Г. М. із співавт., 2018 [7]). Однак, недостатньо уваги приділяється питанням вдосконалення існуючих та розробки нових методів лабораторної діагностики опісторхозу риб, а також нормативній документації, що їх регламентує. Аналіз останніх досліджень і публікацій. Одним з основних факторів, який гальмує розвиток рибництва, є хвороби, що викликаються, зоопаразитами, зокрема збудниками родини Opisthorchiidae (Braun, 1901) [11]. В Україні знаходиться другий за величиною (після Об-Іртишського у Росії) ендемічний осередок опісторхозу в басейні Дніпра з його притоками, а також виявлено осередки в басейнах річок Сіверського Донця, Дунаю, Південного Бугу. На території України зареєстровано наступні види опісторхід: Opisthorchis felineus (Rivolta, 1884), Pseudamphistomum truncatum (Rudolphi, 1819) Luhe, 1908, Metorchis albidus (Braun, 1893), що мають епідеміологічне та епізоотологічне значення [8]. Збудник опісторхозу O. felineus біогельмінт, що викликає природно-осередкове захворювання м'ясоїдних тварин і людини, відноситься до одного з найнебезпечніших харчових паразитів [9]. Зараження дефінітивних господарів відбувається під час вживання сирої, малосоленої,

show abstract

unclassified

Діагностика Опісторхозу Риб Родини Cyprinida: Сучасний Стан Проблеми

Панікар¹,

Запека²,

Скрипка³

2021

Débats Scientifiques Et Orientations Prospectives Du Développement Scientifique Volume3

View full text Add to dashboard Cite

show abstract

Re‐evaluation of certain aspects of the EFSA Scientific Opinion of April 2010 on risk assessment of parasites in fishery products, based on new scientific data. Part 1: ToRs1–3

Koutsoumanis,

Allende,

Alvarez‐Ordóñez

et al. 2024

EFS2

View full text Add to dashboard Cite

Surveillance data published since 2010, although limited, showed that there is no evidence of zoonotic parasite infection in market quality Atlantic salmon, marine rainbow trout, gilthead seabream, turbot, meagre, Atlantic halibut, common carp and European catfish. No studies were found for greater amberjack, brown trout, African catfish, European eel and pikeperch. Anisakis pegreffii, A. simplex (s. s.) and Cryptocotyle lingua were found in European seabass, Atlantic bluefin tuna and/or cod, and Pseudamphistomum truncatum and Paracoenogonimus ovatus in tench, produced in open offshore cages or flow-through ponds or tanks. It is almost certain that fish produced in closed recirculating aquaculture systems (RAS) or flowthrough facilities with filtered water intake and exclusively fed heat-treated feed are free of zoonotic parasites. Since the last EFSA opinion, the UV-press and artificial digestion methods have been developed into ISO standards to detect parasites in fish, while new UV-scanning, optical, molecular and OMICs technologies and methodologies have been developed for the detection, visualisation, isolation and/or identification of zoonotic parasites in fish. Freezing and heating continue to be the most efficient methods to kill parasites in fishery products. High-pressure processing may be suitable for some specific products. Pulsed electric field is a promising technology although further development is needed. Ultrasound treatments were not effective. Traditional dry salting of anchovies successfully inactivated Anisakis. Studies on other traditional processes -air-drying and double salting (brine salting plus dry salting) -suggest that anisakids are successfully inactivated, but more data covering these and other parasites in more fish species and products is required to determine if these processes are always effective. Marinade combinations with anchovies have not effectively inactivated anisakids. Natural products, essential oils and plant extracts, may kill parasites but safety and organoleptic data are lacking. Advanced processing techniques for intelligent gutting and trimming are being developed to remove parasites from fish.

show abstract

Exprerimental infection of laboratory rats with metacercaria of trematodes Paracoenogonimus ovatus (Trematoda, Cyathocotylidae)

Cited by 2 publications

References 1 publication

Діагностика Опісторхозу Риб Родини Cyprinida: Сучасний Стан Проблеми

Діагностика Опісторхозу Риб Родини Cyprinida: Сучасний Стан Проблеми

Re‐evaluation of certain aspects of the EFSA Scientific Opinion of April 2010 on risk assessment of parasites in fishery products, based on new scientific data. Part 1: ToRs1–3

Contact Info

Product

Resources

About