Specific IgA and IgG antibodies in paired serum and breast milk samples in human strongyloidiasis

Mota-Ferreira, Daniela M.L.; Gonçalves-Pires, Maria do Rosário F.; Júnior, Álvaro Ferreira; Sopelete, Mônica Camargo; Abdallah, Vânia Olivetti Steffen; Costa-Cruz, Júlia Maria

doi:10.1016/j.actatropica.2008.09.023

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“…The majority of cases involve chronic lowlevel infection with a minimal and irregular larval output [6,8,9]. Immunologic detection of specific antibodies against Strongyloides is useful for diagnosis because it complements parasitological analysis [10][11][12][13]. Serum is generally used for the detection of specific antibodies.…”

Section: Introductionmentioning

confidence: 99%

Detergent fraction of heterologous antigen to detect IgA and IgG in strongyloidiasis using saliva and serum paired samples

et al. 2010

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Strongyloides stercoralis causes chronic asymptomatic infections in immunocompetent human hosts and systemic invasion in immunocompromised patients, developing into a fatal hyperinfection syndrome. IgA and IgG detection in saliva and serum paired samples were tested using total saline extract from Strongyloides venezuelensis (SE(*)) and its detergent phase (D) extracted with Triton X-114. Saliva and serum paired samples were obtained from: 25 patients with confirmed strongyloidiasis; 25 patients with other parasitoses and 20 from apparently healthy individuals. Sensitivity, specificity, diagnostic efficiency, positive and negative predictive values and likelihood ratio were calculated at the optimum point of reaction. Using D phase sensitivity and specificity to detect IgA in saliva were 76.0% and 88.9% and in serum 80.0% and 86.7%, respectively. To detect IgG, D phase showed sensitivity and specificity of 88.0% and 88.9% in saliva and 88.0% and 84.4% in serum, respectively. D phase proved to be specific and efficient and could be utilized as an alternative antigen for IgA and IgG detection in saliva and serum samples for strongyloidiasis diagnosis.

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Section: Introductionmentioning

confidence: 99%

Detergent fraction of heterologous antigen to detect IgA and IgG in strongyloidiasis using saliva and serum paired samples

et al. 2010

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“…Em relação aos diferentes estágios evolutivos do parasito utilizados como antígenos no imunodiagnóstico, tem sido observada predominância na utilização de larvas filarioides (Conway et al, 1993;Silva et al, 2003;Koosha et al, 2004;Mota-Ferreira et al, 2009;Sultana et al, 2012;Inês et al, 2013). No entanto, estágios diferentes do parasito podem apresentar componentes antigênicos específicos, podendo levar ao reconhecimento de anticorpos específicos do paciente.…”

Section: Discussionunclassified

“…O tampão mais utilizado na extração de frações antigênicas solúveis é o tampão fosfato (PBS) (Rossi et al, 1993b;Conway et al, 1994;Siddiqui et al, 1997;Costa-Cruz et al, 2003;Koosha et al, 2004;Rodrigues et al, 2004;Van Doorn et al, 2007;Mota-Ferreira et al, 2009;Gonzaga et al, 2012;Inês et al, 2013). Este é o principal e mais abundante tampão encontrado em laboratórios, utilizado em diferentes procedimentos e com característica de manter o pH fisiológico.…”

Section: Discussionunclassified

Imunodiagnóstico da estrongiloidíase humana frente a diferentes frações antigênicas de Strongyloides venezuelensis

Corral¹

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A Deus, por me conceder forças e inspiração para realizar esse trabalho de mestrado.Agradeço enormemente ao meu orientador Prof. Dr. Ronaldo Cesar BorgesGryschek por acreditar no meu potencial, por me incentivar a sempre progredir e alcançar meus objetivos profissionais, pela confiança, compreensão, orientação e pela oportunidade para realizar esse trabalho. Agradeço também por sempre se mostrar disponível e ser um modelo de sucesso ético e acadêmico profissional. À Profa. Dra. Fabiana Martins de Paula por toda ajuda laboratorial, pelos ensinamentos, pelas orientações, apoio e especialmente por proporcionar as idas a Ouro Preto. Sem você, não teríamos conseguido chegar onde chegamos! Ao Prof. Dr. William de Castro Borges e toda equipe maravilhosa do laboratório de Enzimologia e Proteômica da UFOP, que me receberam de braços abertos e me permitiram conhecer um pouco mais sobre meu parasito de estudo. Ao Prof. Dr. Pedro Paulo Chieffi, porta de entrada nesse laboratório. Obrigado por acreditar no meu trabalho. pelos valiosos conselhos e orientações no meu exame de qualificação. À Profa. Dra. Maria Aparecida Basile, pela oportunidade de participar das disciplinas Metodologia do Ensino I e II e por permitir que eu fosse seu monitor, seus conselhos e o aprendizado foram extremamente valiosos. A melhor amiga e companheira de laboratório: Maiara Gottardi. Meu ponto de equilíbrio no laboratório. Agradeço-te muito por toda ajuda, amizade, cumplicidade e confiança que desenvolvemos nesse período desde antes do mestrado. Sua presença foi fundamental, principalmente nos momentos de desmotivação. À Caroline Furtado Noble amiga e companheira. Agradeço toda sua ajuda, sobretudo nos momentos de descontração! Aos amigos que agreguei nessa jornada e agora são para a vida toda: Alda . Amigos vocês foram sensacionais. Muito Obrigado por tudo, principalmente nos almoços no bandeijão, nas disciplinas, ou no convívio no laboratório. A todos os funcionários do Laboratório de Imunopatologia da esquistossomose e outras parasitoses (LIM/06) pelo auxílio técnico e por permitir que eu desenvolvesse meu trabalho com vocês. De forma muito especial, agradeço a Dra. Dirce Mary Correia Lima, pois além da convivência diária nesses quase dois anos de laboratório, sua ajuda nas reações e a palavra amiga, fizeram com que eu tivesse mais vontade de seguir em frente em minha carreira. Também agradeço à MSc. Clarice Lemos e à MSc. Maria Cristina Nakle por todo auxílio nas reações, sobretudo no empréstimo de materiais e equipamentos. Vocês foram fundamentais na obtenção dos meus resultados! À Roseli Antonia Santo, secretária do programa de pós-graduação em Doenças Infecciosas e Parasitárias, sua ajuda e principalmente suas informações foram fundamentais para eu chegar até aqui. Também agradeço as orientações para formatação deste trabalho feitas pela Suely Campos Cardoso e Valéria Vilhena. A toda minha família por me aguentarem nesse período de mestrado, especialmente aos meus pais Heloisa e Mario Corral, à minha avó Lais Helena de Camargo Andreetta, à mi...

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“…Por se tratar de um helminto o padrão de resposta imunológica celular induzida é Th2, com secreção de citocinas específicas (IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-9, IL-10, IL-13 e IL-21) (Maizels, 2003;CostaCruz, 2005;Montes et al, 2009 (Brigandi et al, 1996;Herbert et al, 2000;Ligas et al, 2003). Como o ciclo do parasito envolve as mucosas pulmonar e intestinal, o hospedeiro pode elaborar resposta local e sistêmica mediada por IgA (Atkins et al, 1999;Costa et al, 2003;Costa-Cruz 2005;Mota-Ferreira et al, 2009;Ribeiro et al, 2010).…”

Section: Respostas Imunes Do Hospedeirounclassified

Diagnóstico molecular da infecção por Strongyloides venezuelensis pela detecção específica de DNA em amostras de ratos experimentalmente infectados

Fonseca¹

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Specific IgA and IgG antibodies in paired serum and breast milk samples in human strongyloidiasis

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Detergent fraction of heterologous antigen to detect IgA and IgG in strongyloidiasis using saliva and serum paired samples

Detergent fraction of heterologous antigen to detect IgA and IgG in strongyloidiasis using saliva and serum paired samples

Imunodiagnóstico da estrongiloidíase humana frente a diferentes frações antigênicas de Strongyloides venezuelensis

Diagnóstico molecular da infecção por Strongyloides venezuelensis pela detecção específica de DNA em amostras de ratos experimentalmente infectados

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