Recebido em 1/03/2004. Aceito em 7/11/2005 RESUMO -(Ontogênese, anatomia e ultra-estrutura dos nectários extraflorais de Hymenaea stigonocarpa Mart. ex Hayne (FabaceaeCaesalpinioideae)). O jatobá-do-cerrado (Hymenaea stigonocarpa Mart. ex Hayne) apresenta nectários extraflorais (NEFs), os quais são descritos pela primeira vez no gênero. Neste trabalho foram estudadas a distribuição, ontogênese, estrutura e ultra-estrutura dos nectários extraflorais (NEFs). Amostras de folhas em várias fases de desenvolvimento foram coletadas, fixadas e processadas para estudos em microscopia de luz e eletrônica de transmissão e varredura, segundo técnicas convencionais. Testes histoquímicos foram empregados para determinar a natureza química da secreção. Os NEFs estão distribuídos por todo o limbo, sendo mais concentrados nos terços basal e médio de cada folíolo. Estes nectários são embutidos no mesofilo, apresentam tecido secretor envolvido por uma endoderme e são vascularizados por xilema e floema. A atividade secretora dos NEFs é limitada à fase juvenil da folha. Nas folhas mais velhas, os NEFs tornam-se não funcionais. O tecido secretor dos NEFs é formado a partir da protoderme, enquanto a endoderme tem origem no meristema fundamental. No tecido secretor de nectários funcionais as células apresentam citoplasma denso, núcleo volumoso, mitocôndrias, plastídios com sistema de membranas pouco desenvolvido, gotas de óleo dispersas no citosol, dictiossomos e segmentos de retículo endoplasmático liso. A secreção é liberada por meio de rupturas cuticulares e apresenta polissacarídeos e lipídios.Palavras-chave: cerrado, nectário, secreção, ultra-estrutura ABSTRACT -(Ontogenesis, anatomy, and ultrastructure of Hymenaea stigonocarpa Mart. ex Hayne (Fabaceae -Caesalpinioideae) extrafloral nectaries). Hymenaea stigonocarpa Mart. ex Hayne, known as "jatobá-do-cerrado" has extrafloral nectaries (EFNs), which are reported for the first time in Hymenaea genus. In this research the origin, distribution, structure, and ultrastructure of the EFNs were studied. Samples of leaflets at different developmental stages were collected, fixed and processed by standard methods for analyses at light and electronic microscopes; histochemical tests were employed to determine the nature of secretion products. EFNs are distributed all over leaf blade, more concentrated on the basal and medial thirds of each leaflet. These nectaries are embedded in the mesophyll, show secretory tissue surrounded by an endodermis, and are vascularized by xylem and phloem. EFN secretory activity was exclusively observed in young leaves. The protoderm origins the EFN secretory tissue, the ground meristem originates the endodermis and the procambium originates the vascular tissues. Secretory cells of functional EFNs showed dense cytoplasm, large nucleus, mitochondria, plastids with a poorly developed membrane system, oil drops scattered in the cytosol, dictyosome, and smooth endoplasmic reticulum segments. Secretion was released by cuticle rupture and contains polysaccharides and...

Starch hydrolysis contributes to nectar formation, in addition to the photosynthates derived directly from the phloem. In these nectaries, the secretion is an energy-requiring process. During the secretion stage, some plastids show starch grain hydrolysis and membrane rupture, and it was observed that the region previously occupied by this organelle continued to be reasonably well defined, and gave rise to new vacuoles. The extrastomatic bodies appear to be related to the resorption of uncollected nectar.

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I propose a cell-cycle model developed based on observations of different secreting systems, some unpublished results and an extensive literature review, aiming to understand the processes involved in both the secretory process and the release of secretion products. In the absence of facilitated diffusion, a mechanical action of the protoplast is necessary to ensure that some substances can cross the cell wall. The mechanical action of the protoplast, in the form of successive cycles of contraction and expansion, causes the material accumulated in the periplasmic space to cross the cell wall and the cuticle. This action is particularly relevant for the release of lipids, resins and highly viscous hydrophilic secretions. The proposed cell-cycle model and the statements regarding exudate release will also apply to secretory glands not elaborated upon here. Continuous secretion of several days, as observed in extrafloral nectaries, salt glands and some mucilage-producing glands, is only possible because the process is cyclical.

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Colleters are widely distributed and have been reported in several taxa. However, the only report of colleters in the Caryocaraceae family is in Caryocar brasiliense. This study purports to describe the distribution, structure and ultrastructure of colleters in C. brasiliense. Vegetative shoot apices with stipules in different stages of development were collected, fixed, and processed by light, transmission and scanning electron microscopy. Colleters occur on the stipule adaxial face and are differentiated on younger stipules, remaining functional until senescence. Stipules are deciduous, falling before the beginning of leaf expansion. Colleter secretion is abundant, filling all the space delimited by the stipule. Colleter origin is mixed, involving the protoderm and ground meristem. In this species, colleters are finger-shaped, consisting of a column of non-secretory central cells and a secretory epithelium whose cells are arranged in palisades. Secretory epithelium cells show dense cytoplasm, rough endoplasmic reticulum (RER) segments, free ribosomes, mitochondria, and abundant well developed dictyosomes. The colleters central cell shows a flocculated cytoplasm and developed vacuole. These cells have a small lobated nucleus with an inconspicuous nucleolus. Mitochondria and RER stand out in the organelles. There is evidence of granulocrine secretion and colleter involvement with protection of the apical meristem and leaves in the initial stages of development.Keywords: Caryocaraceae, cerrado vegetation, colleter, pequi, secretion. RESUMOOntogênese, ultra-estrutura e secreção dos coléteres de Caryocar brasiliense Camb. (Caryocaraceae)Os coléteres são amplamente distribuídos, com registros de sua ocorrência em diversas taxas, entretanto há apenas um registro de sua ocorrência na família Caryocaraceae, à qual pertence Caryocar brasiliense. Com o objetivo de descrever a distribuição, estrutura e ultra-estrutura dos coléteres de C. brasiliense, amostras de ápices caulinares com estípulas em várias fases de desenvolvimento foram coletadas, fixadas e processadas para estudos em microscopia de luz e eletrônica de transmissão e varredura. Os coléteres ocorrem exclusivamente na face adaxial das estípulas e diferenciam-se nas estípulas mais jovens, mantendose funcionais até a senescência. As estípulas são caducas, caindo antes do início da expansão das folhas. A secreção dos coléteres é abundante, preenchendo todo o espaço delimitado pela estípula. A origem dos coléteres é mista, envolvendo a protoderme e o meristema fundamental, sendo, portanto, considerados como emergências e não tricomas. Nesta espécie, os coléteres são digitiformes, formados por uma coluna de células centrais, não secretoras e por um epitélio secretor cujas células estão dispostas em paliçada. As células do epitélio secretor apresentam citoplasma denso, segmentos de retículo endoplasmático rugoso, ribossomos livres, mitocôndrias e abundância de dictiossomos, dos quais partem inúmeras vesículas possivelmente carregadas com produtos de secreção....

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